viernes, 11 de enero de 2013

TEST DE RIESGO DE CARIES (CRT)


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  2. Sully Cintron 85603. Antes debemos de saber que es una caries y su trayecto...La caries dental ha sido objeto de estudio desde el principio de la humanidad, ya que es una de las enfermedades más comunes en el hombre por lo tanto despertó la curiosidad de los estudiosos que se dedicaban a buscar las causas que le daban origen.

    Fejerskov , en 1997, define la caries como un estado dinámico de desmineralización-remineralización, el cual es el resultado del metabolismo microbiano agregado sobre la superficie dentaria, que resulta en el tiempo una pérdida neta de mineral, siendo posible la aparición, pero no siempre, de una cavidad. Se puede decir que la caries es el desequilibrio del balance fisiológico de todos los factores y que van a determinar la composición del fluido de la placa en la superficie dental. Para este autor, la caries dental no puede ser prevenida pero que sí es posible controlar el progreso de la lesión para evitar que se desarrolle la cavidad.

    La aparición y posterior progreso de la caries se debe a la intervención de tres factores primarios como son: la microbiota local representada por las bacterias acidogénicas, el huésped representado por la saliva y los dientes, la ingesta de carbohidratos y el tiempo.

    Existen otros factores a los que hace referencia Fejerskov que involucran aspectos de salud pública como la promoción de la salud y el entorno social (clase social, educación, ingreso, comportamiento, conocimiento y actitud).

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  3. Sully Cintron 85603.
    ACTIVIDAD CARIOGÉNICA RELACIONADA CON EL FLUJO SALIVAL Y LA CAPACIDAD AMORTIGUADORA DE LA SALIVA.
    Mandel,en 1974, realiza un estudio donde relaciona el flujo salival, en saliva estimulada y en reposo de individuos sanos con la susceptibilidad y actividad cariogénica y concluye que no hay ninguna relación importante entre estas variables y que es la condición patológica de las glándulas salivales la que puede tener una influencia en la disminución del flujo salival y la actividad de caries.

    Posteriormente en 1989, Mandel, luego de estudiar la diferencia que se observó entre un grupo de individuos susceptible a la caries y otro grupo resistentes a ella (totalmente libres de caries y de dientes obturados) llegó a la conclusión que la saliva del grupo resistente a la caries había desarrollado mecanismos de protección más efectivos, es decir la primera capa de la placa dental tenía una capacidad mayor de agregación bacteriana y su permeabilidad estaba disminuida.

    Zengo et al ,en 1971, realizaron estudios entre grupos susceptibles y no a la caries con respecto a dos de los componentes antibacterianos de la saliva como son la IgA y la lactoperoxidasa, tomando la muestra de las glándulas parótida y submaxilar y concluyeron que la IgA estaba aumentada en los individuos no susceptibles a la caries.

    Billings en 1993 refiere que luego de estudiar a un grupo de individuos con disminución del flujo salival, encontró que la variable edad no modificaba significativamente el flujo salival.

    En 1997, Nederfors en un estudio realizado en una población entre 20 y 80 años encontró que las mujeres sanas, no medicadas, presentaban una disminución significativa de flujo salival en comparación con los hombres.

    Fure ,en 1998, señala una mayor incidencia de caries en individuos con una edad comprendida entre 60 y 80 años de edad donde el flujo salival estaba disminuido y el contaje de S. sobrinus estaba incrementado hasta en un 39% durante el período de estudio de 5 años.

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  6. Nicole Ortiz 89074
    FLUJO SALIVAL
    La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada. La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos.

    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.

    Por lo tanto, la composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total. Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental.

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección. El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min. Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.
    La tasa de flujo salival es uno de los puntos más importantes para determinar el riesgo a la caries y la cual puede ser modificada por diferentes factores. Una tasa de flujo salival adecuada es esencial para que la salud bucal se mantenga pero este equilibrio puede interrumpirse al alterarse el balance entre el huésped y los microorganismos, dando lugar al crecimiento excesivo de las bacterias. Como se hizo notar anteriormente, hay factores que influyen en el flujo salival. Antes que nada está el sistema nervioso y ciertos factores tanto biológicos como ambientales que afectan el flujo salival. En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación. Existen muchos factores que tienen influencia sobre la tasa de flujo salival estimulada, cuyo valor promedio es de 7 ml/min aproximadamente. Estos factores son: el estímulo mecánico, el vómito, los estímulos gustativo y olfativo, el tamaño de la glándula y la edad.

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  7. Nicole Ortiz 89074
    Capacidad Amortiguadora o Buffer de la Saliva:
    La función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH. 12 Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente.9 Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el pH, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales.

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  8. joanna guzman 88377
    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.

    Pruebas salivares:
    Medición del flujo salivar
    Capacidad tampón de la misma
    Determinar y cuantificar en la saliva la población de los microorganismos con más potencialidad cariogénica ( estreptococo mutans y lactobacilos)


    Los carbohidratos (azúcar) ingeridos con los alimentos son digeridos también por las bacterias en la cavidad bucal. Los ácidos son un producto de este proceso. Estos ácidos atacan el esmalte dental. Así empieza la caries. La saliva contiene substancias que tienen la capacidad de amortiguar estos ácidos y proteger los dientes. Más saliva se produce el la boca, mejor la protección de los dientes. La boca produce un promedio de 0,5l – 1,5l de saliva por día. De noche la cantidad de saliva disminuye casi a cero. Por eso comer dulces antes de acostarse es particularmente nocivo. Entonces la cantidad insuficiente de saliva favorece el desarrollo de la caries y de las enfermedades periodontales. La saliva contiene también los minerales que son muy importantes para los dientes, como el fosfato y el calcio y también los fluoruros. Estos minerales son incorporados en las lesiones en la fase inicial de la caries (en la capa del esmalte) y de esa manera se puede reparar las lesiones. Además, la saliva contiene también las enzimas que comienzan el proceso de la digestión de los alimentos. Durante el test salivare se puede controlar varios parámetros tales como la producción de saliva: se mastica un glóbulo de parafina durante 5 minutos, se recoge la saliva y se mide la cantidad de la misma. Debería ser por lo menos 1 mililitro por cada minuto. Cantidad insuficiente de saliva puede ser causada por ejemplo por algunos medicamentos, el estrés, el fumar, el embarazo. El chicle favorece la producción de saliva. La capacidad de amortiguar de la saliva. Más ácida la saliva, más alto el riesgo de caries. La flora bacteriana: las bacterias más importantes que causan la caries son los Lactobacillales y Streptococcus Mutans. Se puede establecer la cantidad de estas bacterias en la saliva. La saliva se deposita sobre tiras de prueba y se deja en un contenedor durante varios días y luego se analiza. Más alta la concentración de las bacterias, más grande el riesgo de caries.

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  9. Yaritza M. Báez J. 89393
    La saliva
    Es un fluido que se origina en las glándulas salivales mayores y menores, el cual se produce de manera constante permitiendo una acción limpiadora sobre las superficies de los tejidos duros y blandos de la cavidad bucal. Se encuentran además en su composición propiedades antibacterianas que se originan de factores inmunes específicos y no específicos que incrementan su poder anticariogénico.(4)

    Además, la saliva también posee una capacidad amortiguadora y neutralizadora de los ácidos producidos por los organismos cariogénicos o ingeridos a través de la dieta, permitiéndole mantener un pH relativamente constante. Es también una fuente constante de calcio y fosfato, necesarios para la remineralización del esmalte.(4)

    La saliva se define como una secreción mixta producto de la mezcla de los fluidos provenientes de las glándulas salivales mayores, de las glándulas salivales menores y del fluido crevicular. Contiene agua, mucina, proteínas, sales, enzimas, además de bacterias que normalmente residen en la cavidad bucal, células planas producto de la descamación del epitelio bucal, linfocitos y granulocitos degenerados llamados corpúsculos salivales los cuales provienen principalmente de las amígdalas. Puede ser de consistencia muy líquida o viscosa dependiendo de la glándula que la produzca. (5)

    Las glándulas productoras del fluido salival se dividen en dos grandes grupos: las salivales mayores que están formadas por tres pares de glándulas extrínsecas de gran tamaño: las glándulas parótida, submaxilar y sublingual y las salivales menores formadas por muchas glándulas pequeñas distribuidas por toda la cavidad bucal. (6)

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  10. Yaritza M. Báez J. 89393

    La saliva posee varias funciones entre ella :
    Lubricación
    Capacidad amortiguador o Buffer
    Participacion en la pelicula adquirida
    Antibacteriana
    antenimiento de la integridad de los tejidos duros Etc
    En adelante desarrollaré de forma breve en que se basa cada función.
    Lubricación: la saliva es un lubricante muy activo entre los tejidos blandos, entre los dientes y los tejidos blandos y entre la comida y los tejidos bucales. Además del agua, la presencia de la mucina y de glicoproteínas ricas en prolina contribuyen con las propiedades lubricantes de la saliva.(9) Facilita la formación del bolo alimenticio por su capacidad humectante, humedeciendo los alimentos y transformándolos en una masa semisólida o líquida para que puedan ser deglutidos con facilidad y permite que se tenga sensación de gusto(

    Capacidad Amortiguadora o Buffer: la función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH.

    Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente.(9) Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el pH, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales. (13,14)

    Participación en la formación de la película adquirida: por la presencia de proteínas ricas en prolina; la capa de saliva sobre los dientes y la mucosa pueden crear superficies cargadas e influenciar las uniones microbianas, además de crear una capa de lubricación y protección contra el exceso de humedad, la penetración de ácidos y una débil barrera a la salida de minerales

    Antibacteriana: el tener presente numerosos sistemas antimicrobianos ayuda a controlar la flora bacteriana y en la protección de los tejidos bucales. Las IgA actúan como anticuerpos salivales, cuya función es participar en la agregación bacteriana y prevenir su adhesión a los tejidos duros y blandos de la cavidad bucal. La agregación bacteriana también puede suceder por la interacción entre glicoproteínas mucosas y las adhesinas que son las moléculas receptoras de la superficie bacteriana. Hay proteínas como las histatinas que son un compuesto de sustancias antimicóticas. Además, debemos tomar en cuenta la lucha que mantienen las bacterias entre ellas para poder sobrevivir en el medio bucal, por lo que el producto del metabolismo de alguna especie bacteriana puede ser fatal para otra.(9)

    Lavado y eliminación (aclaramiento salival): lo podemos
    definir como la eliminación de una sustancia presente en la saliva en un tiempo determinado. Este es uno de los roles más importantes de la saliva, ya que diluye los substratos bacterianos y azúcares ingeridos. Se encuentra estrechamente vinculado a la tasa de flujo salival, ya que una tasa de flujo salival disminuida trae como consecuencia que la capacidad de lavado o aclaración de los azúcares en saliva sea menor aumentando la presencia de lesiones cariosas, siendo esto más evidente en la vejez.

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  11. Yaritza Báez 89393
    Mantenimiento de la integridad de los tejidos duros (remineralización; mantenimiento de pH): cuando los dientes hacen erupción, no se encuentran cristalográficamente completos, por lo que la saliva va a proporcionar los minerales necesarios para que el diente pueda completar su maduración, la cual hará que la superficie dentaria sea más dura y menos permeable a medio bucal.
    La supersaturación del calcio y del fosfato en la saliva con respecto al diente, contribuye al desarrollo de los cristales de hidroxiapatita en la fase de remineralización de los tejidos duros durante el proceso carioso. Si no se produjera esta saturación, el diente se disolvería lentamente en boca debido a la disminución del pH que ocurre por acción de los ácidos, producto del metabolismo de la dieta ingerida o de la placa dental.

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  12. Yaritza M.Báez 89393
    FLUJO SALIVAL.
    La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada.(8,11)La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos.

    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.

    Por lo tanto, la composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total.(11) Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección

    El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min.

    Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.

    La tasa de flujo salival es uno de los puntos más importantes para determinar el riesgo a la caries y la cual puede ser modificada por diferentes factores. Una tasa de flujo salival adecuada es esencial para que la salud bucal se mantenga pero este equilibrio puede interrumpirse al alterarse el balance entre el huésped y los microorganismos, dando lugar al crecimiento excesivo de las bacterias. Como se hizo notar anteriormente, hay factores que influyen en el flujo salival. Antes que nada está el sistema nervioso y ciertos factores tanto biológicos como ambientales que afectan el flujo salival.

    En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación

    Existen muchos factores que tienen influencia sobre la tasa de flujo salival estimulada, cuyo valor promedio es de 7 ml/min aproximadamente. Estos factores son: el estímulo mecánico, el vómito, los estímulos gustativo y olfativo, el tamaño de la glándula y la edad.

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  13. Yaritza Báez 89393

    El método de Ericsson
    Es el método clásico normal para determinar la capacidad buffer de la saliva.
    Ud. necesita:

    HCl
    para el método de saliva no estimulada se utiliza HCl 0.0033 mol por litro
    para el método de saliva estimulada se utiliza HCl 0.005 mol por litro
    2-octanol
    Un tubo
    Un embudo
    Un cronometro
    Un aparato electrónico (pH-meter)

    ¿Cómo lo hace?

    Colecte saliva, por el método de la saliva estimulada o no estimulada, descripta en Prueba de Secreción Salival
    Si la saliva reunida es mixta, debe realizarlo dos veces
    1.0 ml de la saliva se transfiere a 3.0 ml HCl (0.0033 mol porpara la saliva no estimulateda, 0.005 mol por l para la saliva estimulada)
    Para prevenir el espumando, agregue una gota de 2-octanol
    Mezclar durante 20 minutos para quitar CO2
    por último el pH en la saliva se evalúa por medio del aparato electrónico (pH-meter)

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  14. Yaritza Báez 89393
    Dentobuff® Strip System

    Un método simplificado se ha desarrollado bajo el nombre de Dentobuff® Strip System. Una almohadilla para la prueba contiene ácidos secos e indicadores de color. Cuando se agrega una gota de saliva, los ácidos son disueltos produciendo una reacción química que muestra un determinado color según el pH de la saliva.



    Materiales necesarios:

    Dentobuff® Strip System, el kit incluye
    tabletas de parafina para masticar y producir la estimulación salival
    tiras indicadoras de pH
    un cuadro de colores normal
    pipetas desechables
    Una copa o tubo
    Cronómetro

    ¿Cómo proceder?

    La saliva es colectada como se describe en la prueba de secreción salival

    Usualmente la prueba de capacidad bufer es tomada junto a la prueba de secrción salival.

    La pipeta se usa para tomar una gota de saliva y colocarla en la tira de prueba.

    Espere cinco minutos y observe el cambio de color con el tiempo transcurrido.

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  15. melodys delgado 2012-0399

    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.

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  16. Los carbohidratos (azúcar) ingeridos con los alimentos son digeridos también por las bacterias en la cavidad bucal. Los ácidos son un producto de este proceso. Estos ácidos atacan el esmalte dental. Así empieza la caries. La saliva contiene substancias que tienen la capacidad de amortiguar estos ácidos y proteger los dientes. Más saliva se produce el la boca, mejor la protección de los dientes. La boca produce un promedio de 0,5l – 1,5l de saliva por día. De noche la cantidad de saliva disminuye casi a cero. Por eso comer dulces antes de acostarse es particularmente nocivo. Entonces la cantidad insuficiente de saliva favorece el desarrollo de la caries y de las enfermedades periodontales. La saliva contiene también los minerales que son muy importantes para los dientes, como el fosfato y el calcio y también los fluoruros. Estos minerales son incorporados en las lesiones en la fase inicial de la caries (en la capa del esmalte) y de esa manera se puede reparar las lesiones. Además, la saliva contiene también las enzimas que comienzan el proceso de la digestión de los alimentos. Durante el test salivare se puede controlar varios parámetros tales como la producción de saliva: se mastica un glóbulo de parafina durante 5 minutos, se recoge la saliva y se mide la cantidad de la misma. Debería ser por lo menos 1 mililitro por cada minuto. Cantidad insuficiente de saliva puede ser causada por ejemplo por algunos medicamentos, el estrés, el fumar, el embarazo. El chicle favorece la producción de saliva. La capacidad de amortiguar de la saliva. Más ácida la saliva, más alto el riesgo de caries. La flora bacteriana: las bacterias más importantes que causan la caries son los Lactobacillales y Streptococcus Mutans. Se puede establecer la cantidad de estas bacterias en la saliva. La saliva se deposita sobre tiras de prueba y se deja en un contenedor durante varios días y luego se analiza. Más alta la concentración de las bacterias, más grande el riesgo de caries.

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  17. Massiel Green-89332.. La saliva es un líquido claro que se fabrica en tu boca las 24 horas del día, cada día. Está formada sobre todo de agua y además de unas cuantas sustancias químicas. Esta cosa resbaladiza la producen las glándulas salivales. Estas glándulas se encuentran en el interior de cada mejilla, en el fondo de la boca, y debajo de la mandíbula justo en la parte frontal de la boca. ¡Estas producen alrededor de 2 a 4 pintas (o alrededor de 1 a 2 litros) de saliva en la boca todos los días!

    La saliva es genial por muchas razones. La saliva humedece los alimentos y hace que tragarlos sea más fácil. Sin la saliva, ese sándwich de queso fundido sería seco como el desierto y difícil de tragar. También ayuda a la lengua permitiendo que puedas sentir los gustos. Una lengua seca no puede decir qué gusto tienen las cosas -necesita a la saliva para mantenerse humedecida.

    La saliva ayuda en el proceso de la digestión. Antes de que los alimentos lleguen a tu estómago, la saliva empieza a descomponerlos mientras aún están en tu boca. Esto lo hace con la ayuda de las enzimas, unas sustancias químicas que se encuentran en la saliva. Descomponer de esta forma los alimentos le facilita un poquito el trabajo a la lengua -así puede empujar más fácilmente hacia la garganta los alimentos masticados.

    La saliva limpia también el interior de la boca y enjuaga los dientes para mantenerlos limpios. (Pero recuerda que la saliva no es suficiente para mantener tus dientes en perfecta forma; ¡aún necesitas cepillártelos y pasarles hilo dental!). Las enzimas de la saliva también ayudan a combatir las infecciones de la boca.

    La capacidad de la saliva que permiteneutralizar los ácidos de la cavidad oralproducidos por los microorganismoscariogenicos o ingeridos a través de la dieta.

    Esta dada para controlar las disminucionesdel PH que resulta de la acción bacterianasobre los carbohidratos fermentables.

    La capacidad amortiguadora dependen dedos mecanismos..MECANISMO QUIMICO

    SISTEMA ACIDOCARBONICO/BICARBONATO
    La capacidad amortiguadora de la salivaopera principalmente durante laingestión de alimentos y la masticación
    .H+ HCO3 H2CO3 CO2+ H2O

    MECANISMO FISICO..
    FLUJO SALIVAL
    La concentración debicarbonato en la saliva seincrementa cuando el flujosalival aumenta.
    SISTEMA FOSFATO: sucapacidad también es relativamenteindependiente del flujo salival.
    PROTEINAS: generan sustanciasalcalinas ( arginina)

    CAPACIDAD BUFFER ENEL PROCESO CARIOSO
    Una mala calcificación de los tejidosdentarios los hace más susceptibles a ladesmineralización, por la acción de losácidos y por lo consiguiente a la cariesya que los tejidos se hacen menosresistentes.

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  18. 2011-0538
    No hay forma de hacer una encuesta para detectar las caries. Incluso para averiguar el riesgo cariogénico de un paciente se necesitan datos clínicos. Por ejemplo: un paciente con bajo riesgo es aquel que presenta restauraciones en buen estado, que mantiene una buena higiene oral sin acumulación de placa y que no ha presentado lesiones nuevas recientemente. Si ha presentado 1 lesión recientemente, o está en tratamiento ortodontico o presenta una higiene regular, ya lo podemos considerar como de riesgo medio. Si el paciente presenta mala higiene oral, bajo flujo salivar, o ha presentado varias lesiones en un pasado reciente, debemos estar alertas pues el riesgo de desarrollar caries se considera elevado.
    Que un paciente te diga que se cepilla los dientes 5 veces al día no significa que tenga una buena higiene oral... Hay que averiguar si lo hace de forma efectiva y para eso lo tienes que examinar. Lo mismo vale para el hilo dental… El consumo de sacarosa por si solo tampoco es determinante, ya que si te cepillas bien después de ingerirlo, deja de ser un factor de riesgo. Por eso ese tipo de encuesta tiene poco significado a la hora de evaluar el riesgo de presentar caries.
    Factores como el ph de la saliva nos dan buenos indicadores del riesgo de desarrollar la caries pues cuanto más alto sea el ph, mejor efecto tampón y por lo tanto, menor el riesgo. El hecho de que el paciente haya sufrido exposición al flúor también nos orienta en cuanto al riesgo. La edad del paciente es otro indicador pues la incidencia de caries disminuye con los años (a la vez que aumentan los problemas periodontales). Y si quieres ir más lejos, las condiciones socio-económicas y culturales también son buenos indicadores, así como ciertas discapacidades físicas, pero para detectar las caries hace falta el dentista.
    Me temo que la única pregunta que realmente tiene sentido en una encuesta para detectar las caries es la de “cuantas veces al año visita a su odontólogo”…

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  19. Rut Ester Rivera Chireno 2012-0076, BIOLOGIA MOLECULAR, lunes de 3pm a 6pm.
    1. En la diapositiva presentada a continuación pude entender hacerca de que La caries dental ha sido objeto de estudio desde el principio de la humanidad, ya que es una de las enfermedades más comunes en el hombre por lo tanto despertó la curiosidad de los estudiosos que se dedicaban a buscar las causas que le daban origen.

    Fejerskov , en 1997, define la caries como un estado dinámico de desmineralización-remineralización, el cual es el resultado del metabolismo microbiano agregado sobre la superficie dentaria, que resulta en el tiempo una pérdida neta de mineral, siendo posible la aparición, pero no siempre, de una cavidad. Se puede decir que la caries es el desequilibrio del balance fisiológico de todos los factores y que van a determinar la composición del fluido de la placa en la superficie dental. Para este autor, la caries dental no puede ser prevenida pero que sí es posible controlar el progreso de la lesión para evitar que se desarrolle la cavidad.

    La aparición y posterior progreso de la caries se debe a la intervención de tres factores primarios como son: la microbiota local representada por las bacterias acidogénicas, el huésped representado por la saliva y los dientes, la ingesta de carbohidratos y el tiempo.

    Existen otros factores a los que hace referencia Fejerskov que involucran aspectos de salud pública como la promoción de la salud y el entorno social (clase social, educación, ingreso, comportamiento, conocimiento y actitud).
    2. Mandel,en 1974, realiza un estudio donde relaciona el flujo salival, en saliva estimulada y en reposo de individuos sanos con la susceptibilidad y actividad cariogénica y concluye que no hay ninguna relación importante entre estas variables y que es la condición patológica de las glándulas salivales la que puede tener una influencia en la disminución del flujo salival y la actividad de caries.

    Posteriormente en 1989, Mandel, luego de estudiar la diferencia que se observó entre un grupo de individuos susceptible a la caries y otro grupo resistentes a ella (totalmente libres de caries y de dientes obturados) llegó a la conclusión que la saliva del grupo resistente a la caries había desarrollado mecanismos de protección más efectivos, es decir la primera capa de la placa dental tenía una capacidad mayor de agregación bacteriana y su permeabilidad estaba disminuida

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  20. Sully Cintron 85603

    La saliva cumple funciones muy importantes en nuestro cuerpo, es por ello que el que su secreción tenga la composición adecuada es consistencia y cantidad es importante.
    La saliva está compuesta por:
    - Agua 96%
    - Moco, de efecto lubricante (mucopolisacaridos y glicoproteinas)
    - Iones (sodio, potasio, cloro, fosfato, bicarbonato y calcio)
    - Sustancias orgánicas como urea, ácido úrico y hormonas
    - Enzimas: amilasa salival o ptialina (inicia la digestión de los carbohidratos),la galactosidasa (descomponen la galactosa) y la lisozima (destructora de bacterias).
    - Globulina (Inmunoglobulina A).
    - Proteína R que protege a la vitamina B12 uniéndose a ella.
    - Todo ello le otorga un pH de 6.3-6.8.
    - Células
    - Opiorfina, que es una sustancia analgésica.
    Por estos componentes es que podemos concluir que la saliva tiene funciones digestivas, potectoras y desinfectante – antibacteriana.
    La función digestiva está dada por el humedecimiento del bolo alimenticio y que este sea tragado fácilmente.Es por esto que la digestión comienza en la boca.
    La función protectora está dada en varias acciones como por ejemplo al mantener húmedos e hidratados los tejidos blandos de los dientes y entre otras acciones por ejemplo al vomitar y en el que se eliminan sustancias extremadamentes ácidas que pueden erosionar a los dientes el cerebro emite una señal previa que aumenta la secreción de la saliva.Esta función protectora hacia los dientes también está dada al poner una película protectora sobre los dientes para evitar la pronta formación de placa bacteriana.
    La función desinfectante y antibacteriana está dada por las sustancias que posee con estas propiedades que la convierten en un desinfectante natural.

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  21. Sully Cintron 85603

    Adquisición y composición de la microbiota oral.

    Antes del parto, el feto vive en un ambiente estéril, rodeado del líquido amniótico y la placenta; es en el momento del nacimiento, cuando se pone en contacto primero en el canal del parto, y posteriormente en el ambiente que le rodea, con los distintos microorganismos que van a colonizar su piel, nariz, cavidad oral y otras regiones corporales. Para ello, estos microorganismos deben ser capaces de adherirse a los epitelios como un primer paso que permita la colonización y multiplicación posteriores. La colonización únicamente puede ser llevada a cabo por microorganismos pertenecientes a la microbiota humana y que lógicamente proceden de la microbiota de las personas que están en contacto con el recien nacido. Los microorganismos de la microbiota humana incluye un gran número de especies que han experimentado una evolución adaptativa que les permite colonizar casi exclusivamente a la especie humana y en su mayoría no pueden colonizar otros habitats fuera del animal con el que mantienen una relación de simbiosis.
    Aunque adquirimos los microorganismos ya durante nuestro nacimiento, factores como la edad, el sexo, la alimentación, el embarazo, el ambiente o el sistema inmune del propio individuo los modificarán con el paso del tiempo. La instauración de la microbiota tan sólo lleva unas pocas semanas en el neonato, ya que lactobacilos, corinebacterias, estafilococos, micrococos, bacilos gram negativos entéricos, levaduras y estreptococos desaparecen a los 2 – 5 días después del nacimiento para ser reemplazados por la microbiota humana.
    Atendiendo a la capacidad de colonización de las bacterias podemos dividirlas en dos grupos: residentes y transeúntes, éstas últimas se encuentran en la superficie epitelial, son fáciles de eliminar, y provienen del contacto con diversos elementos ambientales (ej. objetos, tierra, polvo, aliementos, etc.). Estan bacterias no estan adaptadas a las superficies humanas por residir en otros habitats.

    Podemos definir la microbiota normal de un individuo como el conjunto de microorganismos que se colonizan permanentemente a la mayoría de los individuos sanos de la población, y que ejercen sobre éstos un efecto beneficioso al encargarse de:
    impedir la colonización por otros microorganismos no adaptados a ese habitat (fenómenos de competencia interespecie)
    activar el sistema inmune. Por ejemplo, estimulando la producción de Ig A secretora.
    producir nutrientes esenciales. Por ejemplo, algunas especies como E. coli o Bacteroides spp. sintetizan vitamina B y K, además de enzimas capaces de desconjugar sales biliares y hormonas sexuales.
    Aunque la colonización por estos microorganismos suele considerarse beneficiosa también existen ejemplos experimentales que demuestran lo contrario. Por ejemplo, los animales gnobióticos crecidos y mantenidos de por vida en ambientes libres de microorganismos crecen más robustos, sanos y son más longevos que los no mantenidos bajo esas condiciones experimentales. Tampoco debemos olvidar que un gran número de infecciones hospitalarias y extrahospitalarias son causadas por microorganismos pertenecientes a nuestra propia microbiota (estafilococos, estreptococos, etc.) y no por las especies ambientales que constantemente están en contacto con nosotros.

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  22. Sully Cintron 85603

    La cavidad oral posee una microbiota característica, debido a las condiciones peculiares de nutrientes, pH y humedad, y muy variable en función de distintos factores que confluyen localmente, como la caries, la existencia de dientes, la zona, etc… Un ejemplo es la diferente composición que existe entre la placa supragingival y la placa subgingival, situadas por encima y por debajo de las encías respectivamente.
    Tras el desarrollo de los dientes en el niño, nuevas especies del género Streptococcus (ej. S. sanguis, S. mutans) colonizan la superficie dental. Estas especies no colonizan antes la cavidad oral debido a que con anterioridad al desarrollo de la dentición no existían elementos (ej. superficie dura de hidroxiapatita recubierta de la llamada película adquirida) que permitan la adherencia de estas especies, ilustrandonos así del grado de colonización específica desarrollada a lo largo de la evolución, es decir de la convivencia simbiótica entre microorganismo y hospedador.

    La accesibilidad a los distintos ecosistemas presentes en la cavidad oral facilita el estudio de la interacción hospedador-parásito y de su evolución.

    La microbiota oral es compleja:
    Cocos gram positivos: Streptococcus viridans, S. mutans, S. sanguis, S. salivarius, S. oralis y S. mitis.
    En menor medida: Streptococcus pyogenes, Enterococcus, Staphylococcus, Micrococcus y los anaerobios Peptostreptococcus y Peptococcus.
    Cocos gram negativos: especies del género Neisseria y Veillonella. Tanto aerobios como anaerobios.
    Bacilos gram positivos: Actinomyces, Lactobacillus, Bifidobacterium, C. matruchotii, Rothia dentocariosa y otros llamados difteroides o difteromorfos.
    Bacilos gram negativos: Prevotella, Porphyromonas, Fusobacterium, Capnocytophaga, Actinobacillus, Eikenella, Campylobacter y Haemophilus.
    Otros: Espiroquetas comensales, hongos como Candida, Mycoplasma y escasos protozoos como Trichomonas tenax y Entamoeba gingivalis.

    Es importante señalar que la microbiota oral es cambiante en un mismo ecosistema oral, este proceso se conoce como sucesión microbiana, que es la sustitución de unos organismos por otros, existen dos tipos: alogénica y autogénica.
    La alogénica se produce por cambios en el habitat de tipo no microbiano como el nacimiento, la erupción de los primeros dientes, la vida adulta, la caída de los dientes, el uso de prótesis dentales, etc….
    La autogénica consiste en la sustitución de unos microorganismos por otros más adaptados al ambiente cambiado por los primeros colonizadores debido al consumo de nutrientes, acumulación de productos de desecho excretados, cambios de pH, etc. que propician la colonización por nuevas especies más adapatadas a las nuevas condiciones ambientales del ecosistema microbiano.

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  23. Sully Cintron 85603

    Metabolismo bacteriano

    El metabolismo bacteriano es el conjunto de reacciones o de transformaciones químicas que tiene lugar en un microorganismo para mantener su viabilidad. Estas reacciones son de dos tipos: procesos o reacciones catabólicas, son las que degradan nutrientes y al mismo tiempo liberan energia, y procesos o reacciones anabólicas, son las que tienden a unir las moléculas, es decir, son reacciones de biosíntesis y requieren energía. Las bacterias, como las células, llevan a cabo todos los procesos metabólicos gracias a las enzimas (catalizadores orgánicos que actúan por presencia y aceleran la reacción).

    Las bacterias, como otros seres vivos, están constituidas por 80% de agua; el resto es peso seco y está integrado en gran parte por proteínas, además de ácidos nucleicos, lípidos, peptidoglucano y otros compuestos de bajo peso molecular.

    La célula debe obtener del medio los elementos indispensables para asegurar su crecimiento. Esos elementos son los nutrientes, que pueden ser esenciales o básicos, como el C, el H, el 0, el N o sus compuestos y el P.

    Otros nutrientes necesarios son el K y el Mg.

    Los oligoelementos son los nutrientes que el microorganismo requiere en pequeñas cantidades y los factores de crecimiento en general son vitaminas que la bacteria no puede sintetizar. Este proceso de nutrición se ve favorecido por factores estimulantes.

    En contraste con los organismos superiores, las bacterias exhiben una gran variedad de tipos metabólicos. La distribución de estos tipos metabólicos dentro de un grupo de bacterias se ha utilizado tradicionalmente para definir su taxonomía, pero estos rasgos no corresponden a menudo con las clasificaciones genéticas modernas. El metabolismo bacteriano se clasifica en base a tres criterios importantes: el origen del carbono, la fuente de energía y los donadores de electrones. Un criterio adicional para clasificar a los microorganismos que respiran es el receptor de electrones usado en la respiración.


    Según la fuente de carbono, las bacterias se pueden clasificar como:

    Heterótrofas, cuando usan compuestos orgánicos.
    Autótrofas, cuando el carbono celular se obtiene mediante la fijación del dióxido de carbono.

    Las bacterias autótrofas típicas son las cianobacterias fotosintéticas, las bacterias verdes del azufre y algunas bacterias púrpura. Pero hay también muchas otras especies quimiolitotrofas, por ejemplo, las bacterias nitrificantes y oxidantes del azufre.

    Según la fuente de energía, las bacterias pueden ser:

    Fototrofas, cuando emplean la luz a través de la fotosíntesis.
    Quimiotrofas, cuando obtienen energía a partir de sustancias químicas que son oxidadas principalmente a expensas del oxígeno (respiración aerobia) o de otros receptores de electrones alternativos (respiración anaerobia).

    Según los donadores de electrones, las bacterias también se pueden clasificar como:

    Litotrofas, si utilizan como donadores de electrones compuestos inorgánicos.
    Organotrofas, si utilizan como donadores de electrones compuestos orgánicos.

    Los organismos quimiotrofos usan donadores de electrones para la conservación de energía (durante la respiración aerobia, anaerobia y la fermentación) y para las reacciones biosintéticas (por ejemplo, para la fijación del dióxido de carbono), mientras que los organismos fototrofos los utilizan únicamente con propósitos biosintéticos

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  24. Sully Cintrón 85603

    Crecimiento bacteriano

    El crecimiento bacteriano no se caracteriza por un aumento del tamaño sino por un aumento del número.

    En los organismos pluricelulares el crecimiento implica un aumento de tamaño. Lo que se interpreta como crecimiento bacteriano en realidad es la división o multiplicación bacteriana. Este proceso se realiza por fisión simple o binaria.

    La célula aumenta de volumen; lo que en los bacilos se traduce en elongación, el DNA cromosómico se autoduplica, va produciéndose un tabique en la parte central de la célula por la invaginación de la membrana celular, acompañada de la síntesis de pared. Como resultado quedan dos células hijas exactamente iguales.

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  25. Sully Cintrón 85603

    Condiciones atmosféricas

    Las condiciones atmosféricas para un microorganismo están dadas por el potencial de óxido-reducción.

    La respiración bacteriana consiste en reacciones de óxido-reducción, que son reacciones en cadena en las que varía el aceptor final de electrones o de hidrógeno. Esta reacción desprende energía que se puede utilizar para sintetizar ATPy así mantener activo el metabolismo.

    Los microorganismos pueden ser clasificados de la siguiente manera:

    Aerobios

    Son los que requieren oxígeno porque éste es el aceptor final de hidrógeno, con el que forman agua y CO2.

    Estos microorganismos se diferencian por producir una enzima catalasa que desdobla el peróxido de hidrógeno en agua y oxígeno naciente.

    Anaerobios

    Son los que viven en ausencia de oxígeno atmosférico. En este caso el aceptor final de hidrógeno es un compuesto inorgánico que se puede reducir, como los nitratos y los sulfatos.

    Un tipo particular es la fermentación, un proceso de oxidación incompleta, totalmente anaeróbico, siendo el producto final un compuesto orgánico, que al reducirse será el receptor final de los electrones. Se obtienen como producto de desecho diversos ácidos o alcoholes. La fermentación es posible porque el contenido de energía de los sustratos es mayor que el de los productos, lo que permite que los organismos sinteticen ATP y mantengan activo su metabolismo. Este tipo de "respiración" es el que poseen muchos de los microorganismos orales.

    Microaerófilos

    Son aquellos que requieren bajas concentraciones de oxígeno para crecer.

    Estos microorganismos, al igual que los aerobios, utilizan el oxígeno como fuente de energía pero no toleran la concentración de oxígeno del aire atmosférico sino que requieren niveles que no superen el 15% de este gas. Esto es consecuencia de su susceptibilidad a los radicales superóxido (molécula de oxígeno con un electrón). Estos radicales se generan en cultivos aerobios.

    Hay microorganismos aerobios estrictos, otros facultativos e incluso algunos anaerobios que segregan una enzima, la superóxido dismutasa. Esta enzima tiene la particularidad de contrarrestar los radicales superóxido, que son muy tóxicos, y de transformarlos en peróxido de hidrógeno. Este es un metabolismo alternativo y protector.

    También existen categorías intermedias como anaerobios obligados (microorganismos que jamás utilizan el oxígeno) y anaerobios moderados (microorganismos que toleran de un 2 a un 8% de este gas). Algunos microorganismos se comportan como anaerobios aerotolerantes porque sobreviven un tiempo en presencia de oxígeno y otros como anaerobios facultativos que aceptan indistintamente una situación u otra.

    Hay un grupo de microorganismos que se desarrollan mejor cuando hay concentraciones elevadas de CO2 en el medio, son los capnófilos.

    En la cavidad bucal existen todas estas variantes y los capnófilos se encuentran especialmente aumentados en las personas con alteraciones periodontales.

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  26. Sully Cintrón 85603


    FUNCIONES DE LA MICROBIOTA ORAL.
    Se define microbiota como el conjunto de microorganismos (bacterias y hongos) que colonizan nuestra anatomía estableciendo con nosotros una “relación simbiótica”. En las personas adultas se estima que existen 1014 microorganismos, lo que supone 100 veces el número de células del propio individuo. Lo normal es que desempeñen un papel beneficioso para nosotros. La microbiota del cada tejido va cambiando en función de las características físicas y químicas de la zona determinada.

    Estos microorganismos son muy típicos en las zonas expuestas al mundo exterior como la piel (Staphylococcus y Propionibacterium spp.), la cavidad oral (Streptococcus y Bacterias anaerobias), el tracto respiratorio (naso-faringe) (Staphylococcus y Streptococcus), la mucosa intestinal (microorganismos anaerobios) y la mucosa genital (Lactobacillus). Por el contrario no suelen aparecer en tejidos como el sanguíneo o el linfático, ya que de hacerlo nos encontraríamos ante una enfermedad.

    Estos microorganismos se organizan en auténticos ecosistemas microbianos que confieren al hospedador grandes beneficios, entre los que se encuentra la protección contra organismos patógenos (causantes de enfermedades) que intentan colonizar la misma zona compitiendo con ellos por el espacio vital y los nutrientes. Esa protección se basa en la secreción de sustancias como las bacteriocinas en el caso de las bacterias. Mientras tanto ellos adquieren un soporte donde multiplicarse, una temperatura estable y un aporte de nutrientes. Esta relación biológica entre huésped y microbiota se denomina simbiosis. Cuando los ecosistemas se alteran tiene lugar un fenómeno de disbiosis haciendo al hospedador en este caso susceptible de sufrir infecciones por patógenos oportunistas.

    Los microorganismos que componen la microbiota, por ejemplo, del tubo digestivo, son imprescindibles para el mantenimiento de las condiciones de salud ya que contribuyen al metabolismo de los ácidos biliares y a la síntesis de algunas vitaminas. En otras mucosas provocan cambios ambientales que condicionan la colonización por otras especies microbianas. Por ejemplo los lactobacilos mantienen el pH ácido del fluido vaginal dificultando la colonización y multiplicación de otros microorganismos.

    Podríamos concretar que las funciones de la microbiota general son las siguientes:
    - Mantener el estado de salud del hospedador.
    - Incrementar la resistencia a ser colonizados por microorganismos ajenos la microbiota normal.
    - Reducir el riesgo de superinfección por parásitos endógenos.
    - Contribuir al desarrollo del hospedador en el ambiente natural.
    - Contribuir a la nutrición del hospedador.
    - Detoxificación de compuestos ingeridos.
    - Potenciar el desarrollo del tejido linfoide.
    - Eliminar las aminas aromáticas heterocíclicas
    - Desmetilación de metil-mercurio

    La función de la microbiota oral es impedir implantación de patógenos oportunistas, colaborando con los mecanismos de defensa del hospedador para controlar el crecimiento y reproducción de los microecosistemas que moran en la cavidad bucal. Cuidar la composición de estos microsistemas bióticos permite prevenir enfermedades locales y disminuir las consecuencias asociadas a problemas que tengan relación con su permanencia en la boca

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  27. Sully Cintrón 85603

    La prueba de Snyder consiste en incubar una muestra de saliva, estimulada con parafina, mezclada con verde de bromocresol y agar dextrosa, con pH de 5.0 a 37° C por tres días. Un cambio del indicador hacia el color amarillo (el color verde ya no predomina, el pH es de 4.2 o menor) en 24 horas indica una actividad de caries elevada, si no hay cambio a las 72 la actividad cariogénica es baja.

    Esto se llevará a cabo para demostrar a profesores, padres de familia y alumnos, qué tanto influye la condición socioeconómica y los hábitos alimenticios y de higiene bucal en la incidencia de caries entre un estrato social mas elevado y otro de menores recursos. Con todo esto se pretendió crear conciencia para que se mejoren los hábitos de higiene bucal en los niños, sin importar el nivel socioeconómico del que provengan, y así tratar de erradicar en mayor número el índice de caries en niños
    Se ha demostrado que existe un polimorfismo genético de la saliva, dichos factores biológicos, como la nutrición, así como características fisiológicos especificas se pueden modificar su contenido y función además se presenta una variación individual que influyen en la prevalecía de caries dental y otras enfermedades dentales. Establecimiento de un rango de valores normales presenta el pase inicial para determinar dichas variaciones individuales. A pesar de esto poco se conoce de las características fisiológicas y biológicas que determinan la composición de la saliva en diferentes poblaciones.

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  28. Gabriela Santiago 89384

    La saliva es una secreción compleja proveniente de las glándulas salivales mayores en el 93% de su volumen y menores en el 7% restante. El 99% de la saliva es agua mientras que el 1% restante está constituido por moléculas orgánicas e inorgánicas. Si bien la cantidad de saliva es importante, también lo es la calidad de la misma.
    Se revisará los componentes de la saliva y sus funciones en el mantenimiento de la salud oral los principales factores causales que alteran la secreción salival, se comentará la importancia de la saliva en el desarrollo de la enfermedad de caries y en la formación de la placa bacteriana, y se analizará su papel como material de ayuda para el diagnóstico de algunas patologías. Las variaciones en el flujo salival pueden verse afectadas por múltiples factores fisiológicos y patológicos, de forma reversible o irreversible. Juega un papel fundamental en el mantenimiento de la integridad de las estructuras bucales, en la vida de relación, en la digestión y en el control de infecciones orales. El papel de la saliva en la protección frente a la caries podemos concretarlo en cuatro aspectos, dilución y eliminación de los azúcares y otros componentes, capacidad tampón, equilibrio entre la desmineralización / remineralización y acción antimicrobiana.
    La saliva como alternativa para el diagnóstico, de algunas enfermedades, como elemento para monitorizar la evolución de determinadas patologías o la dosificación de medicamentos o drogas proporciona una vía prometedora. La accesi- bilidad en su obtención y la correlación positiva entre múltiples parámetros en el suero y en la saliva son algunas de las ventajas que ofrece como instrumento diagnóstico.

    Determinación del flujo salival:
    La saliva puede clasificarse en estimulada y en reposo, basal o no estimulada. La no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos.

    La estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.
    La composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total. Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental.

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección. El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min. Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.

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  29. Gabriela Santiago 89384
    La saliva es una secreción compleja proveniente de las glándulas salivales mayores en el 93% de su volumen y menores en el 7% restante. El 99% de la saliva es agua mientras que el 1% restante está constituido por moléculas orgánicas e inorgánicas. Si bien la cantidad de saliva es importante, también lo es la calidad de la misma.
    Se revisará los componentes de la saliva y sus funciones en el mantenimiento de la salud oral los principales factores causales que alteran la secreción salival, se comentará la importancia de la saliva en el desarrollo de la enfermedad de caries y en la formación de la placa bacteriana, y se analizará su papel como material de ayuda para el diagnóstico de algunas patologías. Las variaciones en el flujo salival pueden verse afectadas por múltiples factores fisiológicos y patológicos, de forma reversible o irreversible. Juega un papel fundamental en el mantenimiento de la integridad de las estructuras bucales, en la vida de relación, en la digestión y en el control de infecciones orales. El papel de la saliva en la protección frente a la caries podemos concretarlo en cuatro aspectos, dilución y eliminación de los azúcares y otros componentes, capacidad tampón, equilibrio entre la desmineralización / remineralización y acción antimicrobiana.
    La saliva como alternativa para el diagnóstico, de algunas enfermedades, como elemento para monitorizar la evolución de determinadas patologías o la dosificación de medicamentos o drogas proporciona una vía prometedora. La accesi- bilidad en su obtención y la correlación positiva entre múltiples parámetros en el suero y en la saliva son algunas de las ventajas que ofrece como instrumento diagnóstico

    .El test de Alban se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde original del medio virando al amarillo.
    La prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa...),pero esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor.

    La prueba de Snyder consiste en incubar una muestra de saliva, estimulada con parafina, mezclada con verde de bromocresol y agar dextrosa, con pH de 5.0 a 37° C por tres días. Un cambio del indicador hacia el color amarillo (el color verde ya no predomina, el pH es de 4.2 o menor) en 24 horas indica una actividad de caries elevada, si no hay cambio a las 72 la actividad cariogénica es baja.

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  30. iris cedeño 81972
    Capacidad Amortiguadora o Buffer: la función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH.

    Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente.(9) Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el pH, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales.

    Participación en la formación de la película adquirida: por la presencia de proteínas ricas en prolina; la capa de saliva sobre los dientes y la mucosa pueden crear superficies cargadas e influenciar las uniones microbianas, además de crear una capa de lubricación y protección contra el exceso de humedad, la penetración de ácidos y una débil barrera a la salida de minerales

    Antibacteriana: el tener presente numerosos sistemas antimicrobianos ayuda a controlar la flora bacteriana y en la protección de los tejidos bucales. Las IgA actúan como anticuerpos salivales, cuya función es participar en la agregación bacteriana y prevenir su adhesión a los tejidos duros y blandos de la cavidad bucal. La agregación bacteriana también puede suceder por la interacción entre glicoproteínas mucosas y las adhesinas que son las moléculas receptoras de la superficie bacteriana. Hay proteínas como las histatinas que son un compuesto de sustancias antimicóticas. Además, debemos tomar en cuenta la lucha que mantienen las bacterias entre ellas para poder sobrevivir en el medio bucal, por lo que el producto del metabolismo de alguna especie bacteriana puede ser fatal para otra.

    Lavado y eliminación (aclaramiento salival): lo podemos
    definir como la eliminación de una sustancia presente en la saliva en un tiempo determinado. Este es uno de los roles más importantes de la saliva, ya que diluye los substratos bacterianos y azúcares ingeridos. Se encuentra estrechamente vinculado a la tasa de flujo salival, ya que una tasa de flujo salival disminuida trae como consecuencia que la capacidad de lavado o aclaración de los azúcares en saliva sea menor aumentando la presencia de lesiones cariosas, siendo esto más evidente en la vejez.

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  31. En el proceso
    carioso se presupone que
    la saliva sea un agente influyente; razón por
    la cual constituye el estudio de este fluido
    un factor importante en la búsqueda de elementos concretos que permitan relacionar las propiedades y composición química de
    la saliva con enfermedades que afecten la
    cavidad bucal,así como el empleo de la
    saliva para efectuar diagnósticos de utilidad
    práctica no sólo para el odontólogo sino
    para el médico en general.

    Entre las pruebas utilizadas para evaluar
    la actividad de caries y que están relacionadas directamente con la saliva se encuentran la determinación de la tasa de
    flujo y la viscosidad salival.
    El fundamento para la evaluación de
    estos aspectos se basa en la observación de
    que los pacientes con saliva espesa y viscosa casi siempre tienen una experiencia de caries mayor que el promedio.
    Por otra
    parte estudios realizados han demostrado
    una mayor incidencia de caries asociada
    con disminución del flujo salival en pacientes con ausencia congénita de glándulas salivales, o una menor salivación a causa de
    determinadas enfermedades o al uso
    prolongado de drogas
    depresoras de la salivación, tales como tranquilizantes,
    antihistamínicos, antidepresivos,
    etc, que
    afectan el sistema nervioso autónomo y
    bloquean parcialmente la transmisión de los
    impulsos nerviosos a las glándulas saliva
    les.

    La sequedad bucal puede ser también el
    resultado de radiación excesiva de las
    glándulas salivales durante la radioterapia.
    Variaciones en la tasa de flujo influyen
    en muchos de los componentes químicos y
    propiedades de la saliva, entre las que se
    encuentran la de mantener y proteger las
    estructuras de la cavidad bucal debido a
    que contribuye a la remoción de los residuos alimentarios de los dientes(efecto
    limpiador);además coayuda con iones minerales y componentes inorgánicos al esmalte de los dientes y contiene
    buffers
    que
    ayudan a la neutralización de los ácidos que
    se forman en la placa.

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  32. Arline Morales #87523

    Placa Dentobacteriana:
    • La placa bacteriana es una acumulación heterogénea de restos de alimentos, saliva y una comunidad microbiana variada, aerobia y anaerobia.

    • Se adhiere a la superficie de los dientes o al espacio gingival dentario.

    • Es de consistencia blanda, mate, color blanco-amarillo.

    • Se forma en pocas horas y no se elimina con agua a presión, ya que es pegajosa.

    • Varía de un individuo a otro, siendo también diferente según la localización anatómica.

    La placa funciona como un hábitat para gran cantidad de bacterias, pero en especial para el estreptococo mutans que es la principal bacteria relacionada con la caries.

    • Se calcula que un miligramo de placa contiene cerca de 500 millones de estreptococos.
    • Este tiene la capacidad de transformar algunos alimentos, en especial los azúcares en ácidos, los cuales dañan de manera microscópica la estructura de los dientes desmineralizándolos, causando la caries y a la encía irritándola y por consiguiente inflamándola, provocando la gingivitis.

    • La placa y los estreptococos requieren aproximadamente de 24 horas para estructurarse, pero una vez constituidos transforman en segundos el azúcar en ácido.


    Para que se forme la placa dentobacteriana, es necesario que la persona después de consumir alimentos no se cepille los dientes o bien tenga una deficiente técnica de cepillado y también a la ausencia del use del hilo dental.

    • La placa dentobacteriana se forma y se combina con la saliva, la cual contiene disueltas partículas de carbonato de calcio y otros minerales.

    • Estos minerales cuando se acumulan después de un tiempo calcifican a la placa dentobacteriana y es cuando se forma el sarro o calculo dental.

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  34. Arline Morales #87523

    AGENTES ANTIPLACA

    Entre estos se encuentran:
    LOS DENTRIFICOS:
    Los dentrificos son conocidos como pastas de dientes y desde antaño se han usado para contribuir a la limpieza de los dientes.

    Hasta hace pocos años, de los dentífricos, el efecto cosmético era el más considerado, pero los avances tecnológicos ha hecho que en ellos se incluyan substancias con efectos terapéuticos. Por ello, hoy en día existen en el mercado gran cantidad de dentífricos con efectos diversos sobre las piezas dentarias y las encías.
    Error que suele suceder ya que en general los dentífricos usados deben ser distintos según las edades y según las tendencias patológicas bucales. Así por ejemplo, no utilizará el mismo dentífrico una persona que sus dientes no soporten el agua fría que otra que le sangren las encías.

    La eliminación de la placa bacteriana se realiza por medios mecánicos. Hemos visto que está adherida y con un cepillado adecuado la desprenderemos de la superficie dentaria. Por lo dicho anteriormente, cabe pensar que los dentífricos serian innecesarios para realizar la higiene dental y en realidad hay técnicas que desechan el uso de dentífricos y preconizan el uso exclusivo del cepillo dental.

    Podemos obviar los dentífricos en algunas ocasiones, pero debido a los efectos terapéuticos que poseen, creemos que se deben usar en la mayoría de los casos.

    ABRASIVOS:
    Los abrasivos son substancias que al aplicarlos sobre las piezas dentarias, durante el cepillado, eliminan los depósitos acumulados.

    Por lo que se ha dicho podemos pensar que pueden dañar los tejidos dentarios, pero hay estudios y existe una escala de abrasividad en la que constan los abrasivos permitidos que no dañan a los dientes. Los dentífricos deben tener un índice de abrasividad comprendido entre los 50 y 200 RDA (abrasión de la dentina radiactiva).

    Los abrasivos más utilizados son:

    Bicarbonato sódico micronizado
    Carbonato cálcico
    Benzoato sódico
    Fosfato sódico
    Fosfato cálcico (meta y piro)
    Metafosfato de sodio
    Hidróxido de Aluminio y lactato de aluminio
    Alúmina
    Silicatos: Xerogel y aerogel de sílice

    HUMECTANTES:
    Son agentes que evitan el endurecimiento del dentífrico, se usan:

    glicerina
    sorbitol
    xilitol
    1,2 propilenglico

    SUBSTANCIAS ANTIPLACA BACTERIANA:
    Son agentes que actúan sobre la placa bacteriana, eliminando los microorganismos que la forman, inhibiendo la formación de la matriz de la placa y eliminando la placa formada.

    Los más usados son:

    Clorhexidina (Digluconato de)
    Triclosán
    Sanguinarina
    Hexetidina
    Citrato de zinc
    Fluoruros: Fluoruro de Estaño
    Aceites esenciales
    Lauryl sulfato de sodio (substancia tensio activa con efecto antiplaca)

    La CLORHEXIDINA ha sido el más usado y potente de todos los citados. Se usa a concentraciones de 0,12%, 0,2% y al 0.05% es bacteriostático y bactericida. Actúa sobre el estreptococo mutans (caries) y la cándida albicans (Micosis), tiene una sustantividad (tiempo de actuación) de 7-12 horas. No se han descrito resistencias, ni alteraciones del equilibrio bacteriano oral.

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  35. Iris Nicaury Jimenez
    Mat 88461

    La Saliva
    Es un fluido orgánico complejo producido por las glándulas salivales en la cavidad bucal, y directamente involucrada en la primera fase de la digestión.
    La saliva puede ser vehículo de contagio de enfermedades en humanos, como el herpes labial o la mononucleosis.
    Se estima que la boca está humedecida por la producción de entre 1 y 1.5 litros de saliva al día, durante la vida de una persona se generan unos 34.000 litros. Esta cantidad de saliva es variable ya que va disminuyendo conforme avanzan los años y debido a diferentes tratamientos.1

    La producción de saliva está relacionada con el ciclo circadiano, de tal manera que por la noche se segrega una mínima cantidad de saliva.

    La saliva es segregada por las glándulas salivares mayores parótida y submaxilar (80%- 90%)) en condiciones estimuladas, mientras que las glándulas sublinguales producen solo el 5% del total. Las glándulas menores son responsables basicamente de la secreción en reposo y contribuyen al 5% al 10% del total de saliva secretada.2

    La disminución patológica de saliva recibe el nombre de hiposalivación o hiposialia, mientras que la sensación de sequedad bucal se denomina xerostomía, y la producción excesiva, sialorrea. La medición de la producción de la saliva se llama sialometría.

    Características y composición de la saliva

    La saliva es un líquido transparente y de viscosidad variable, lo cual se atribuye al ácido siálico. Es inodora como el agua.

    La composición y pH de la saliva varían en función de los estímulos (como el olor o la visión de la comida). El pH salival normal oscila entre 6,5 y 7.3

    La composición de la saliva es similar a la del plasma y se caracteriza por los siguientes componentes:

    Agua: Representa un 99,5 %.4 5 Permite que los alimentos se disuelvan y se pueda percibir su sabor a través del sentido del gusto.
    Iones cloruro: Activan la amilasa salival o ptialina.
    Bicarbonato y fosfato: Neutralizan el pH de los alimentos ácidos y de la corrosión bacteriana.
    Moco:: El contenido de mucina, glicoproteina fundamental de la saliva, produce la viscosidad necesaria para funciones lubricantes y de formación del bolo alimenticio que facilita la deglución a lo largo del tubo digestivo, sin dañarlo.
    Lisozima: Es una sustancia antimicrobiana que destruye las bacterias contenidas en los alimentos, protegiendo en parte los dientes de la caries y de las infecciones.
    Enzimas: Como la ptialina, que es una amilasa que hidroliza el almidón parcialmente en la boca, comenzando la digestión de los hidratos de carbono. La lipasa lingual inicia también la digestión de grasas.
    Estaterina: Con un extremo amino terminal muy ácido, que inhibe la precipitación de fosfato cálcico al unirse a los cristales de hidroxiapatita. Además, también tiene función antibacteriana y antifúngica.
    Calcio: La saliva está saturada de Ca++, con lo que se evita que los dientes lo pierdan y ayuda a digerir el alimento.
    Otras sustancias: La saliva contiene también inmunoglobulinas específicas, transferrina y lactoferrina.


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  37. Iris Nicaury Jimenez
    Mat 66461

    Funciones de la Saliva:

    Mantener el pH neutro, es decir a 6,5. Esta capacidad tamponadora del medio al neutralizar el medio ácido producido tras las comidas evita la desmineralización del esmalte dental y la acumulación de sarro que se produce con un pH básico.
    Cicatrización: Además de favorecer la mineralización del esmalte de los dientes por su capacidad tamponadora, la saliva contiene también un factor de crecimiento epidérmico que facilita la cicatrización de la mucosa bucal lesionada.
    Función digestiva: Por el efecto de las enzimas que contiene, al mezclarse con el alimento junto con la masticación lo transforma en bolo alimenticio, iniciando la digestión de carbohidratos y grasas y facilitando la deglución.
    Función gustativa: la saliva permite que las partículas sápidas (responsables del sabor) de los alimentos alcancen y estimulen químicamente los corpúsculos gustativos en la cavidad oral especialmente en la lengua. Por eso la sensibilidad gustativa es menos cuando disminuye la secresion salival por la edad avanzada, efectos de ciertos medicamentos o por trastornos patológicos.
    Lubricar la cavidad oral, además de facilitar la primera fase de la digestión y la deglución en la especie humana es importante en la expresión oral al facilitar la articulación de las palabras.
    Mantener el equilibrio hídrico, al disminuir su producción por deshidratación envía un mensaje de alarma al organismo produciendo la sensación de sed.
    Protección: La saliva por su composición enzimática, especialmente por la lizosima, las inmunoglobulinas y las proteinas como la muramidasa y la lactoferrina, defiende a la cavidad oral de la infección bacteriana.

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  39. Iris Nicaury Jimenez
    Mat 88461
    La prevención contra las caries, la podemos hacer a diferentes niveles y es la suma de todos ellos el que nos lleva a una disminución del índice de caries.

    APLICACIÓN TÓPICA DE FLÚOR
    El objetivo del flúor tópico es formar fluorapatita en el periodo post eruptivo de las piezas dentarias. La aplicación puede realizarse de varias formas:

    DENTÍFRICOS
    Los dentífricos fluorados son extensamente usados, es la forma más sencilla de autoaplicación de flúor, ya que cada vez que se realiza un cepillado hay aplicación de flúor.
    Varía la concentración de flúor en las diferentes marcas comerciales. A mayor concentración mejor efecto tópico y por tanto mayor cantidad de flúor que pasa al esmalte dentario.

    DIFERENTES DENTÍFRICOS FLUORADOS
    Los componentes de Flúor más utilizados son: fluoruro sódico o monofluorfosfato de sodio (MFP).Otros son Fluorhidrato de nicometanol (Fluorinol).
    El problema de los dentífricos fluorados es que mal utilizados pueden conducir a una fluorosis. En niños menores de 6 años, hay que ir con cuidado ya que se tragan el dentífrico y entonces actúa como flúor sistémico, llegándose a ingerir excesivas cantidades de flúor.

    COLUTORIOS
    son de fácil aplicación y aquí nos vamos a referir a los de baja concentración, que son los que el paciente usa a nivel domiciliario.
    Según la concentración de flúor, se pueden usar a diario o una vez a la semana. Los de uso diario tienen una concentración de 0.05 % de flúor y el semanal 0,2% de flúor.
    Los colutorios a alta concentración son menos usados ya que los demás sistemas se han mostrado más eficaces. Se puede usar soluciones de Fluoruro sódico al 2%, Fluoruro de estaño al 8% y soluciones de fluorfosfato ácido.

    APLICACIÓN DE FLÚOR EN LA CLÍNICA DENTAL
    A nivel profesional, podemos aplicar flúor de diferentes maneras:

    *COLUTORIOS DE ALTA CONCENTRACION
    son menos usados ya que los demás sistemas se han mostrado más eficaces. Se puede usar soluciones de Fluoruro sódico al 2%, Fluoruro de estaño al 8% y soluciones de fluorfosfato ácido (APF).

    GELES
    Es el sistema más utilizado en las clínicas dentales para aplicar flúor tópico. Se usan geles de flúor fosfatoácido al 1,23%, y más actual es el uso de geles de fluoruro sódico al 2%. La ventaja de éstos es que tienen menos acidez y alteran menos las restauraciones de composites y cerámicas que puede llevar un paciente.
    Se aplican en cubetas desechables, las dos arcadas a la vez y un tiempo máximo de 4 minutos.

    BARNICES
    se usan en las clínicas dentales, tienen la ventaja que el flúor aplicado, debido una laca soporte, se mantienen más tiempo en contacto con el diente, y por tanto más posibilidad de formación de fluorapatita.
    Los barnices están indicados en niños menores de 6 años, ya que estos se tragan los geles.
    También están indicados en pacientes que no soportan, debido a las nauseas, las cubetas de los geles. Está indicado en disminuidos psíquicos y en adultos como elemento antisensibilidad dentinaria.

    SELLADO DE FISURAS
    Es un método preventivo muy eficaz, se realiza en la Clínica dental y se basa en colocar un material sellador en las fosas y fisuras de las caras oclusales de premolares y molares, con el objeto de que no entre placa bacteriana en ellos y no se inicie la caries dental.

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  40. Determinacion del Flujo Salivar

    La saliva proviene de tres glándulas principales: las glándulas parótidas, submaxilares y sublinguales. Desde el punto de vista histológico, éstas suelen clasificarse en glándulas puramente serosas, mixtas serosas, mucosas y puramente mucosas, respectivamente. También se toman en cuenta glándulas mucosas menores que se hallan presentes en muchas regiones de la boca y que han sido clasificadas como glándulas sublingual menor, lingual, labial, bucal, palatina y glosopalatina; estas glándulas menores proporcionan de un 7 a 8% del volumen total de saliva en condiciones tanto de reposo como de estimulación.

    El flujo salival (volumen de saliva, producido en las glándulas salivales en la unidad de tiempo) se describe como uno de los factores que cuando presenta una disminución significativa favorece la aparición de caries dental; este hecho se ha observado en pacientes con xerostomía, debido a la ingestión de drogas, radioterapia u otras enfermedades que afectan la normofunción de las glándulas salivales. En la actualidad, numerosos trabajos refieren una asociación significativa entre la prevalencia de caries dental y la baja tasa de flujo salival.

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  41. Determinacion de la Saliva No Estimulada

    La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada. La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos. Es muy importante ya que esta realacionada con el tiempo de aclaramiento de azucar y acidos en la boca.

    En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación

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  42. Determinacion de la Saliva Estimulada

    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.

    Por lo tanto, la composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total. Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental.

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  43. Medida de Capacidad Tampon de la Saliva

    Capacidad Amortiguadora o Buffer: la función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH.

    Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente. Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el pH, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales.

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  44. Test de Alban

    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde original del medio virando al amarillo.
    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira del refrigerador (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.
    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las 24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0…..No hay cambio de color
    1…..Cambia 1/4 del tubo
    2…..El viraje abarca 1/2 tubo
    3…..Hasta 3/4 del tubo
    4…..Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza lentamente.
    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa…), esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor. Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede “ver” sus progresos.

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  45. Test de Snyder

    Esta prueba está basada en el tiempo e intensidad con que cambia el pH del medio de cultivo inoculado con una muestra de saliva. La acción de microorganismos acidogénicos anaerobios sobre la glucosa presente en el medio de cultivo permite que al acidificarse el medio cambie el indicador de pH, verde de bromocresol, desde el color azul verdoso característico hasta una tonalidad amarillo-limón, la velocidad a la que se efectué este cambio indicara la actividad cariogénica de la muestra, a menor tiempo de cambio mayor actividad.

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  46. Recuentos Salivares de Lactobacillus

    Los lactobacilos se hayan más localizados y están concentrados en el interior de las grietas, en los espacios interproximales y a nivel de los bordes gingivales, o sea las regiones donde tienden a ocurrir las caries.
    Los lactobacilos se relacionan con la progresión de la lesión cariosa en corona y/o raíz. El alto grado de infección por lactobacilos (>106 UFC lactobacilos/mL de saliva), se relaciona con elevada actividad de caries y con la elevada ingestión de carbohidratos fermentables.

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  47. Recuentos Salivares de Estreptococos Mutans

    Los estreptococos se encuentran en grandes cantidades en la boca. Como estos son capaces de convertir rápidamente los carbohidratos en ácido, la mayoría de los investigadores han llegado a la conclusión de que estos microorganismos desempeñan un papel predominante en la formación de caries. El estreptococos mutans parece seguir más cerca el proceso cariógeno.
    Actualmente el recuento de Estreptococos mutans se usa como ayuda diagnóstica para seleccionar grupos de pacientes con riesgo de caries. Recuentos superiores a 100 000 UFC/mL de Estreptococos en saliva, se consideran indicadores de riesgo de caries, y recuentos salivales más bajos concuerdan con una tendencia mínima a contraer esta enfermedad. Los altos grados de infección por Estreptococo mutans (>106 UFC ´ >105 mL/saliva), significan elevado riesgo de caries y de transmisión del microorganismo.

    La caries dental ocurre cuando los metabolitos ácidos del estreptococo disuelven la dentina. La disolución progresa a cavitación, y si no es tratada, a invasión de la pulpa dental, y de allí las bacterias pueden acceder a la circulación.

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  48. CRT Bacteria Test

    La prueba de riesgo a caries CRT bacteria , permite la determinación simultánea del número de estreptococo mutans y de lactobacilos en la saliva por medio de agares selectivos. El agar mitis salivarius con bacitracina sirve para el registro de los estreptococos mutans; y el medio de cultivo claro, el agar de Rogosa sirve para la evaluación de los lactobacilos. Los agares llevan unas láminas que los protegen de la contaminación y evitan que se deshidraten y el soporte impide que los medios de cultivo se escurran.

    También se mide el índice de flujo salival y la capacidad amortiguadora. La saliva tiene un papel muy importante en el mantenimiento de boca y dientes sanos, adoptando para ello numerosas funciones de protección:-lavar
    -humectar
    -defender de las bacterias
    -eliminar alimentos
    -transportar elementos protectores

    Sólo puede llevar a cabo sus funciones de forma satisfactoria si las glándulas salivales la producen en cantidad suficiente, existen circunstancias que se puede reducir el flujo salival como:
    -Ingestión de ciertos medicamentos
    -Distintas enfermedades
    -Radioterapia en la zona de la cabeza
    -Estreés

    Si la saliva no se producen en las cantidades necesarias su acción protectora falla y el riesgo a caries aumenta.

    Por lo que con está prueba se determina el indice de flujo salival, tomando con la pipeta una muestra de saliva y colocándola en el papel testigo después de un minuto se verifica con la tabla el cambio de color y el riesgo alto (violeta), mediano (bronce) o amarillo (bajo) a caries.

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  49. Alfredo junior castano
    88708


    Determinación del flujo salival no estimulada:

    Para la obtención del flujo salival no estimulado: se sentó al paciente en postura recta y relajada y se recogió la saliva durante 5 minutos en vasos calibrados y se determinó el índice de flujo salival no estimulado.

    Utilizamos un recipiente calibrado en mililitros (ml) para la recolección de la saliva. Una vez observados los pasos expuestos anteriormente, se mandó al paciente a acumular saliva durante un período total de cinco (5) minutos en la boca sin tragar6. Para la obtención de los datos de Flujo Salival No Estimulado se dividió la cantidad de ml de saliva obtenida en el recipiente calibrado entre 5 con lo cual obtenemos el Flujo Salival no Estimulado por minuto


    Determinación del flujo salival estimulado:

    Observados los pasos expuestos anteriormente considerados para la toma del Flujo Salival no Estimulado, procedimos a colocar en la boca del paciente una cápsula de parafina para estimular la producción de saliva.

    Se coloca la cápsula de parafina en la boca hasta que se ponga blanda (30 seg.), se le indica al paciente que trague la saliva que se produjo durante este tiempo.

    Posteriormente se manda al paciente a masticar la parafina durante un período de cinco (5) minutos y luego debe expulsar la saliva acumulada durante este tiempo en el recipiente calibrado.




    Para la obtención del flujo salival estimulado: se sentó al paciente en postura recta y relajada, se le dio al paciente la cápsula de parafina para estimular la producción de la saliva, se recogió la saliva durante 5 minutos en vasos calibrados y se determinó el flujo salival estimulado, se extrajo la tira de prueba CRT buffer del envase sin tocar el campo activo amarillo, se colocó la tira de prueba con el campo activo hacia arriba sobre una superficie estable de papel secante, se humectó el campo activo con la ayuda de una pipeta. Después de 5 minutos se comparó el color del campo activo con la muestra de colores, para determinar la capacidad amortiguadora de la saliva.

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  50. CRT Buffer
    Prueba para determinar la capacidad de amortiguación de la saliva

    CRT buffer establece la acción protectora de la saliva. El sistema de amortiguación que se integra en la saliva es capaz de neutralizar los ácidos que pueden dañar los dientes. Mediante la determinación de la capacidad de amortiguación de la saliva, puede establecer con qué precisión el sistema de amortiguación realiza esta importante tarea en cada caso concreto. La prueba sobre el riesgo de padecer caries CRT buffer permite determinar de forma rápida y eficaz la capacidad amortiguadora de la saliva.
    Indicaciones
    Determinación de la capacidad amortiguadora de la saliva
    Ventajas: Rápido y fácil de usar, resultados en tan solo 5 minutos, resultados fiables

    Beneficios para el equipo de profesionales
    Prueba exhaustiva para determinar el nivel de riesgo de caries, la base para el tratamiento determinado, intervalos de refuerzo individualizados para el mantenimiento de los dientes a largo plazo

    Metodo de snyder

    La prueba de Snyder consiste en incubar una muestra de saliva, estimulada con parafina, mezclada con verde de bromocresol y agar dextrosa, con pH de 5.0 a 37° C por tres días. Un cambio del indicador hacia el color amarillo (el color verde ya no predomina, el pH es de 4.2 o menor) en 24 horas indica una actividad de caries elevada, si no hay cambio a las 72 la actividad cariogénica es baja. (6)

    Esto se llevará a cabo para demostrar a profesores, padres de familia y alumnos, qué tanto influye la condición socioeconómica y los hábitos alimenticios y de higiene bucal en la incidencia de caries entre un estrato social mas elevado y otro de menores recursos. (7) Con todo esto se pretendió crear conciencia para que se mejoren los hábitos de higiene bucal en los niños, sin importar el nivel socioeconómico del que provengan, y así tratar de erradicar en mayor número el índice de caries en niños
    Se ha demostrado que existe un polimorfismo genético de la saliva, dichos factores biológicos, como la nutrición, así como características fisiológicos especificas se pueden modificar su contenido y función además se presenta una variación individual que influyen en la prevalecía de caries dental y otras enfermedades dentales. (8) establecimiento de un rango de valores normales presenta el pase inicial para determinar dichas variaciones individuales. A pesar de esto poco se conoce de las características fisiológicas y biológicas que determinan la composición de la saliva en diferentes poblaciones

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  51. TEST DE ALBAN
    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se
    basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva
    estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene,
    entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa
    produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde
    original del medio virando al amarillo.
    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de
    rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira de la nevera (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de
    realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en
    que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal
    estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el
    tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.

    RECUENTO SALIVALES DE LACTILOBACCILLUS ACIDOFILUS Y STREPTOCOCCUS MUTANS

    Objetivo: observar el crecimiento in vitro de Streptococcus mutans y Lactobacillus acidophilus en una solución con edulcorantes xylitol,
    aspartame, sucralosa y sacarina sódica en concentraciones de 5% y compararlo con dos grupos control, uno sin edulcorante y otro con sacarosa.
    Material y Método: se emplearon 30 tubos con Streptococcus mutans y 30 con Lactobacillus acidophilus, los cuales fueron divididos en seis
    grupos de cinco tubos cada uno: xylitol, aspartame, sacarina sódica y sucralosa (grupos de edulcorantes) y sacarosa y sin endulzante (grupo
    control). Las cepas de ambos microorganismos se cultivaron en agar y se mantuvieron en incubadora durante dos días. Las colonias se
    sometieron a pruebas de pureza; los edulcorantes fueron descontaminados y la solución empleada fue esterilizada. En 5ml de la solución se
    colocó cada edulcorante al 5% y 100 µl de suspensión de uno de los microorganismos. Los tubos fueron colocados en la incubadora durante 48
    horas. El crecimiento de las bacterias fue medido en un espectrofotómetro calibrado.
    Resultados: Streptococcus mutans y Lactobacillus acidophilus con presencia de xylitol presentaron mayores promedios de tramitancia,
    similares a los valores encontrados en 'sin edulcorantes' en el grupo control para ambos microorganismos. Los valores de tramitancia más bajos
    fueron para el aspartame con ambas bacterias. Se encontró diferencia entre el grupo con edulcorante y el control y al interior de cada grupo
    para ambos microorganismos (p<0,05).
    Conclusiones: el Xylitol y la sacarina sódica reducen significativamente el crecimiento in vitro del Streptococcus mutans y Lactobacillus
    acidophilus, mientras que la sacarosa, la sucralosa y el aspartame lo estimulan.

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    3. anyelina quiroz livari 87599

      microbiota oral

      Microbiota Bucal
      Cuando hablamos de varias comunidades de microorganismos que se encuentran interactuando en la cavidad bucal, se caracteriza por ser extraordinariamente compleja en géneros y especies microbianas; la mayoría de autores coinciden en señalar la presencia de más de 300 especies en el ambiente oral, de las cuales solo 20 actúan como residentes.
      Ecología Bucal
      La cavidad bucal se encuentra en el tercio inferior de la cara y esta dividido por los arcos alveolares en dos regiones .
      La ecología no solo estudia las interrelaciones entre los organismos y su ambiente vivo y no vivo, sino además el papel y contribuciones de estos organismos en la naturaleza y en los ciclos biológicos y ecológicos que mantienen en equilibrio los delicados eventos que ocurren en un ambiente determinado.
      En ella existe una amplias diversidad de tejidos, microorganismos y ambientes; por esto, aunque en un conjunto por si misma continuaría un ecosistema.
      El desarrollo de microorganismos orales usualmente envuelve una sucesión de poblaciones. (Hay colonias pioneras).
      Estudia las relaciones entre los organismos y su ambiente
      En estado de equilibrio, la mayoría de las bacterias de la cavidad oral son compatibles con la salud: no producen enfermedad.
      Existen aproximado de 200 especies diferentes que colonizan y que interactúan entre sí.
      Cuando se conjugan circunstancias especiales del ambiente oral, de los mecanismos de virulencia del microorganismo y de las condiciones y comportamiento del huésped, estas bacterias se convierten en actores principales, causando enfermedades y virulencia.
      DIVISION DE LA MICROBIOTA ORAL:
      * Residente: Es la que esta perfectamente adaptada a la zona donde se encuentra pues todos los factores endógenos le son favorables; por ello, persiste un cierto tiempo( por ejemplo los estreptococos en la cavidad oral)

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  52. anyelina quiroz livari 87599

    la cavidad oral como habitat

    Antes del parto, el feto vive en un ambiente estéril, rodeado del líquido amniótico y la placenta; es en el momento del nacimiento, cuando se pone en contacto primero en el canal del parto, y posteriormente en el ambiente que le rodea, con los distintos microorganismos que van a colonizar su piel, nariz, cavidad oral y otras regiones corporales. Para ello, estos microorganismos deben ser capaces de adherirse a los epitelios como un primer paso que permita la colonización y multiplicación posteriores. La colonización únicamente puede ser llevada a cabo por microorganismos pertenecientes a la microbiota humana y que lógicamente proceden de la microbiota de las personas que están en contacto con el recien nacido. Los microorganismos de la microbiota humana incluye un gran número de especies que han experimentado una evolución adaptativa que les permite colonizar casi exclusivamente a la especie humana y en su mayoría no pueden colonizar otros habitats fuera del animal con el que mantienen una relación de simbiosis.

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  53. anyelina quiroz livari 87599

    la saliva
    La saliva (también conocida como baba) es un fluido orgánico complejo producido por las glándulas salivales en la cavidad bucal, y directamente involucrada en la primera fase de la digestión.

    La saliva puede ser vehículo de contagio de enfermedades en humanos, como el herpes labial o la mononucleosis.

    Se estima que la boca está humedecida por la producción de entre 1 y 1.5 litros de saliva al día, durante la vida de una persona se generan unos 34.000 litros. Esta cantidad de saliva es variable ya que va disminuyendo conforme avanzan los años y debido a diferentes tratamientos.[1]

    La producción de saliva está relacionada con el ciclo circadiano, de tal manera que por la noche se segrega una mínima cantidad de saliva.

    La saliva es segregada por las glándulas salivares mayores parótida y submaxilar (80%- 90%)) en condiciones estimuladas, mientras que las glándulas sublinguales producen solo el 5% del total. Las glándulas menores son responsables basicamente de la secreción en reposo y contribuyen al 5% al 10% del total de saliva secretada.[2]

    La disminución patológica de saliva recibe el nombre de hiposalivación o hiposialia, mientras que la sensación de sequedad bucal se denomina xerostomía, y la producción excesiva, sialorrea.

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  54. anyelina quiroz livari 87599

    composicion de la saliva

    La saliva es un líquido transparente y de viscosidad variable, lo cual se atribuye al ácido siálico. Es inodora como el agua.

    La composición y pH de la saliva varían en función de los estímulos (como el olor o la visión de la comida). El pH salival normal oscila entre 6,5 y 7.[3]

    La composición de la saliva es similar a la del plasma y se caracteriza por los siguientes componentes:

    * Agua: Representa un 99,5 %.[4] [5] Permite que los alimentos se disuelvan y se pueda percibir su sabor a través del sentido del gusto.
    * Iones cloruro: Activan la amilasa salival o ptialina.
    * Bicarbonato y fosfato: Neutralizan el pH de los alimentos ácidos y de la corrosión bacteriana.
    * Moco:: El contenido de mucina, glicoproteina fundamental de la saliva, produce la viscosidad necesaria para funciones lubricantes y de formación del bolo alimenticio que facilita la deglución a lo largo del tubo digestivo, sin dañarlo. [6]
    * Lisozima: Es una sustancia antimicrobiana que destruye las bacterias contenidas en los alimentos, protegiendo en parte los dientes de la caries y de las infecciones.
    * Enzimas: Como la ptialina, que es una amilasa que hidroliza el almidón parcialmente en la boca, comenzando la digestión de los hidratos de carbono. La lipasa lingual inicia también la digestión de grasas.[6]
    * Estaterina: Con un extremo amino terminal muy ácido, que inhibe la precipitación de fosfato cálcico al unirse a los cristales de hidroxiapatita. Además, también tiene función antibacteriana y antifúngica.
    * Otras sustancias: La saliva contiene también inmunoglobulinas específicas, transferrina y lactoferrina. En el 2006 investigadores franceses del Instituto Pasteur identificaron una sustancia en la saliva humana que llamaron Opiorfina, similar a la encontrada en ratas y vacas, que es hasta seis veces más potente que la morfina para calmar el dolor. [7] [2]
    * Calcio: La saliva está saturada de Ca++, con lo que se evita que los dientes lo pierdan y ayuda a digerir el alimento.

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  55. anyelina quiroz livari 87599

    funciones

    En los humanos y mamíferos, así como en reptiles la saliva es muy importante para:

    * Mantener el pH neutro, es decir a 6,5. Esta capacidad tamponadora del medio al neutralizar el medio ácido producido tras las comidas evita la desmineralización del esmalte dental y la acumulación de sarro que se produce con un pH básico.
    * Cicatrización: Además de favorecer la mineralización del esmalte de los dientes por su capacidad tamponadora, la saliva contiene también un factor de crecimiento epidérmico que facilita la cicatrización de la mucosa bucal lesionada.[8]
    * Función digestiva: Por el efecto de las enzimas que contiene, al mezclarse con el alimento junto con la masticación lo transforma en bolo alimenticio, iniciando la digestión de carbohidratos y grasas y facilitando la deglución. [6]
    * Función gustativa: la saliva permite que las partículas sápidas (responsables del sabor) de los alimentos alcancen y estimulen químicamente los corpúsculos gustativos en la cavidad oral especialmente en la lengua. Por eso la sensibilidad gustativa es menos cuando disminuye la secresion salival por la edad avanzada, efectos de ciertos medicamentos o por trastornos patológicos.[2]
    * Lubricar la cavidad oral, además de facilitar la primera fase de la digestión y la deglución en la especie humana es importante en la expresión oral al facilitar la articulación de las palabras.[6]
    * Mantener el equilibrio hídrico, al disminuir su producción por deshidratación envía un mensaje de alarma al organismo produciendo la sensación de sed.[6]
    * Protección: La saliva por su composición enzimática, especialmente por la lizosima, las inmunoglobulinas y las proteinas como la muramidasa y la lactoferrina, defiende a la cavidad oral de la infección bacteriana. [6] Así mismo. en especies como las serpientes venenosas y de cierto tipo de musaraña, como el almiquí o solenodon, el veneno que las protege de depredadores y enemigos es saliva modificada.[9]
    * La saliva del dragón de Komodo tiene hasta 82 tipos diferentes de bacterias que provocan una septicemia en su presa, que muere a las pocas horas lo cual permite al animal cazarla sin esfuerzo

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    1. yulenny montero lopez 86144

      la microbiota ora

      Aunque adquirimos los microorganismos ya durante nuestro nacimiento, factores como la edad, el sexo, la alimentación, el embarazo, el ambiente o el sistema inmune del propio individuo los modificarán con el paso del tiempo. La instauración de la microbiota tan sólo lleva unas pocas semanas en el neonato, ya que lactobacilos, corinebacterias, estafilococos, micrococos, bacilos gram negativos entéricos, levaduras y estreptococos desaparecen a los 2 – 5 días después del nacimiento para ser reemplazados por la microbiota humana.
      Atendiendo a la capacidad de colonización de las bacterias podemos dividirlas en dos grupos: residentes y transeúntes, éstas últimas se encuentran en la superficie epitelial, son fáciles de eliminar, y provienen del contacto con diversos elementos ambientales (ej. objetos, tierra, polvo, aliementos, etc.). Estan bacterias no estan adaptadas a las superficies humanas por residir en otros habitats.

      Podemos definir la microbiota normal de un individuo como el conjunto de microorganismos que se colonizan permanentemente a la mayoría de los individuos sanos de la población, y que ejercen sobre éstos un efecto beneficioso al encargarse de:

      * impedir la colonización por otros microorganismos no adaptados a ese habitat (fenómenos de competencia interespecie)
      * activar el sistema inmune. Por ejemplo, estimulando la producción de Ig A secretora.
      * producir nutrientes esenciales. Por ejemplo, algunas especies como E. coli o Bacteroides spp. sintetizan vitamina B y K, además de enzimas capaces de desconjugar sales biliares y hormonas sexuales.

      Aunque la colonización por estos microorganismos suele considerarse beneficiosa también existen ejemplos experimentales que demuestran lo contrario. Por ejemplo, los animales gnobióticos crecidos y mantenidos de por vida en ambientes libres de microorganismos crecen más robustos, sanos y son más longevos que los no mantenidos bajo esas condiciones experimentales. Tampoco debemos olvidar que un gran número de infecciones hospitalarias y extrahospitalarias son causadas por microorganismos pertenecientes a nuestra propia microbiota (estafilococos, estreptococos, etc.) y no por las especies ambientales que constantemente están en contacto con nosotros.

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    2. yulenny montero lopez 86144

      la microbiota oral

      La cavidad oral posee una microbiota característica, debido a las condiciones peculiares de nutrientes, pH y humedad, y muy variable en función de distintos factores que confluyen localmente, como la caries, la existencia de dientes, la zona, etc… Un ejemplo es la diferente composición que existe entre la placa supragingival y la placa subgingival, situadas por encima y por debajo de las encías respectivamente.
      Tras el desarrollo de los dientes en el niño, nuevas especies del género Streptococcus (ej. S. sanguis, S. mutans) colonizan la superficie dental. Estas especies no colonizan antes la cavidad oral debido a que con anterioridad al desarrollo de la dentición no existían elementos (ej. superficie dura de hidroxiapatita recubierta de la llamada película adquirida) que permitan la adherencia de estas especies, ilustrandonos así del grado de colonización específica desarrollada a lo largo de la evolución, es decir de la convivencia simbiótica entre microorganismo y hospedador.

      La accesibilidad a los distintos ecosistemas presentes en la cavidad oral facilita el estudio de la interacción hospedador-parásito y de su evolución.

      La microbiota oral es compleja:
      Cocos gram positivos: Streptococcus viridans, S. mutans, S. sanguis, S. salivarius, S. oralis y S. mitis.
      En menor medida: Streptococcus pyogenes, Enterococcus, Staphylococcus, Micrococcus y los anaerobios Peptostreptococcus y Peptococcus.
      Cocos gram negativos: especies del género Neisseria y Veillonella. Tanto aerobios como anaerobios.
      Bacilos gram positivos: Actinomyces, Lactobacillus, Bifidobacterium, C. matruchotii, Rothia dentocariosa y otros llamados difteroides o difteromorfos.
      Bacilos gram negativos: Prevotella, Porphyromonas, Fusobacterium, Capnocytophaga, Actinobacillus, Eikenella, Campylobacter y Haemophilus.
      Otros: Espiroquetas comensales, hongos como Candida, Mycoplasma y escasos protozoos como Trichomonas tenax y Entamoeba gingivalis.

      Es importante señalar que la microbiota oral es cambiante en un mismo ecosistema oral, este proceso se conoce como sucesión microbiana, que es la sustitución de unos organismos por otros, existen dos tipos: alogénica y autogénica.
      La alogénica se produce por cambios en el habitat de tipo no microbiano como el nacimiento, la erupción de los primeros dientes, la vida adulta, la caída de los dientes, el uso de prótesis dentales, etc….
      La autogénica consiste en la sustitución de unos microorganismos por otros más adaptados al ambiente cambiado por los primeros colonizadores debido al consumo de nutrientes, acumulación de productos de desecho excretados, cambios de pH, etc. que propician la colonización por nuevas especies más adapatadas a las nuevas condiciones ambientales del ecosistema microbiano.

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  56. yulenny montero lope 86144

    FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROOGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos: a) fisicoquímicos; b) de adhesión, agregación, y coagregación; c) nutricionales; d) protectores del hospedador y e) antagónicos bacterianos.

    1. FACTORES FÍSICOQUÍMICOS

    La mayoría de los géneros y especies microbianas relacionados con el hombre crecen, se reproducen y viven en unas condiciones ambientales que suelen ser bastante similares. Dichas condiciones, si no óptimas, no deberán exceder de los límites de la tolerancia que, al menos, permiten una cierta proliferación microbiana o simplemente sobrevivir. Para los ecosistemas primarios orales, estas condiciones antibióticas están representadas por:

    • Humedad
    El agua es un factor importante para las bacterias, y dependen de él para el intercambio de nutrientes, para las reacciones metabólicas y para la eliminación de productos inhibidores de desecho. El agua será un factor favorable al desarrollo microbiano en la cavidad oral, ya que su disponibilidad, debido a la saliva que baña todos los ecosistemas primarios, excepto el surco gingival, es muy elevada. En situaciones patológicas como la Xerostomía(disminución de la secrección salivar glandular, con alta prevalencia entre personas de la tercera edad y en pacientes con el Síndrome de Sjogren) o la Sialorrea(excesiva salivación, fisiológico en niños y típico de patologías del aparato gastrointestinal superior) se rompe el balance que evita por un lado el excesivo crecimiento y por otro la limpieza de restos que también lo favorecerían.

    • pH
    El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano. En estos casos, una bajada excesiva del pH, que generalmente alcanza el pH 5 tras ingestión de azucar, puede dañar el esmalte bucal por disolución de los cristales de hidroxiapatita

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  57. yulenny montero lopez 86144

    la saliva
    La saliva está compuesta en un 98% por agua, pero también contiene otras muchas sustancias importantes:

    Electrolitos: sodio, potasio, calcio, magnesio, cloruro, bicarbonato y fosfato.
    Moco: mucopolisacáridos y glicoproteinas.
    Compuestos antibacterianos: tiocianato, peróxido de hidrógeno e inmunoglobulina A.
    Enzimas:
    Amilasa: comienza la digestión del almidón mientras la comida está en la boca. Actúa a un pH óptimo de 7.4.
    Lisozima: rompe la membrana de las bacterias.
    Lipasa lingual: la lipasa digiere las grasas, pero al tener un pH óptimo de 4 no se activa hasta que entra en un entorno ácido.
    Otras enzimas menores.
    Células: posiblemente unos 8 millones de células humanas y 500 millones de bacterias por mililitro. La presencia de productos bacterianos (pequeños ácidos orgánicos, aminas y tioles) es la causa de que algunas veces la saliva tenga mal olor.
    Opiorfina: una sustancia analgésica.

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  58. yulenny montero lopez 86144

    la saliva

    La saliva es el fluido orgánico propio de la boca. Está compuesto mayoritariamente por agua (en un 99%) y es básica su función lubrificante, pues permite desde el mantenimiento íntegro de las mucosas (éstas se deteriorarían si estuvieran secas) hasta una correcta articulación de las palabras.

    La saliva se produce en las glándulas salivales. La producción diaria en el ser humano es de 0.5-1.5 litros, pero depende de factores como la ingesta de agua o la estimulación según la dieta. A lo largo del día también hay variación en la cantidad de secreción de saliva: Ésta es mínima por la noche. Algunos medicamentos pueden disminuir el flujo salival.

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  59. FLUJO SALIVAL.
    La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada.(8,11)La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos.(8)

    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.(8,11)

    Por lo tanto, la composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total.(11) Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental.(17)

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección.( 10)

    El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min.(8)

    Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.(18)

    La tasa de flujo salival es uno de los puntos más importantes para determinar el riesgo a la caries y la cual puede ser modificada por diferentes factores.(19) Una tasa de flujo salival adecuada es esencial para que la salud bucal se mantenga pero este equilibrio puede interrumpirse al alterarse el balance entre el huésped y los microorganismos, dando lugar al crecimiento excesivo de las bacterias. Como se hizo notar anteriormente, hay factores que influyen en el flujo salival. Antes que nada está el sistema nervioso y ciertos factores tanto biológicos como ambientales que afectan el flujo salival.

    En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación.(20)

    Existen muchos factores que tienen influencia sobre la tasa de flujo salival estimulada, cuyo valor promedio es de 7 ml/min aproximadamente. Estos factores son: el estímulo mecánico, el vómito, los estímulos gustativo y olfativo, el tamaño de la glándula y la edad. (11)

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  60. Determinación del flujo salival no estimulad:
    Utilizamos un recipiente calibrado en mililitros (ml) para la recolección de la saliva. Una vez observados los pasos expuestos anteriormente, se manda al paciente a acumular saliva durante un período total de cinco (5) minutos en la boca sin tragar. Para la obtención de los datos de Flujo Salival No Estimulado se dividió la cantidad de ml de saliva obtenida en el recipiente calibrado entre 5 con lo cual obtenemos el Flujo Salival no Estimulado por minuto.

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  61. Determinación del flujo salival estimulado:
    Observados los pasos expuestos anteriormente considerados para la toma del Flujo Salival no Estimulado, se procede a colocar en la boca del paciente una cápsula de parafina para estimular la producción de saliva.

    Se coloca la cápsula de parafina en la boca hasta que se ponga blanda (30 seg.), se le indica al paciente que trague la saliva que se produjo durante este tiempo.

    Posteriormente se manda al paciente a masticar la parafina durante un período de cinco (5) minutos y luego debe expulsar la saliva acumulada durante este tiempo en el recipiente calibrado.

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  62. MEDICIÓN DE LA CAPACIDAD BUFFER
    La capacidad búffer de la saliva incluye tres sistemas principales: el bicarbonato (HCO-3), el fosfato, y sistema búffer de proteínas. El sistema búffer del bicarbonato es el más importante y los otros dos tienen una importancia muy menor. La saliva cumple funciones buffer principalmente gracias a la presencia de bicarbonato, si la saliva mantiene un pH alto y constante se favorece el proceso de remineralización de los dientes, en presencia de calcio libre en la saliva. De esta manera en pacientes con caries incipientes sin cavitación el proceso carioso es reversible siempre que haya un pH adecuado y calcio suficiente para ello. La concentración de bicarbonato aumenta al aumentar el flujo salival, así como también su capacidad de neutralizar ácidos, por lo tanto la presencia de bicarbonato logra disminuir el nivel ácido de los gérmenes cariogénicos, también la capacidad de desmineralización de la placa bacteriana será menor y sus efectos dañinos se minimizan. El sistema bicarbonato es bajo en la saliva no estimulada y aumenta a medida que la saliva es estimulada. En la saliva no estimulada, la concentración del buffer del fosfato inorgánico es más alto, mientras que el sistema bicarbonato / ácido carbónico es baja.

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  63. Determinacion de la capacidad tampon
    CRT buffer establece la acción protectora de la saliva. El sistema de amortiguación que se integra en la saliva es capaz de neutralizar los ácidos que pueden dañar los dientes. Mediante la determinación de la capacidad de amortiguación de la saliva, puede establecer con qué precisión el sistema de amortiguación realiza esta importante tarea en cada caso concreto. La prueba sobre el riesgo de padecer caries CRT buffer permite determinar de forma rápida y eficaz la capacidad amortiguadora de la saliva.
    Indicaciones

    Determinación de la capacidad amortiguadora de la saliva

    Ventajas

    Rápido y fácil de usar
    Resultados en tan solo 5 minutos
    Resultados fiables

    Beneficios para el equipo de profesionales

    Prueba exhaustiva para determinar el nivel de riesgo de caries
    La base para el tratamiento determinado
    Intervalos de refuerzo individualizados para el mantenimiento de los dientes a largo plaz

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  64. fatima hernandez 84514
    Metodo de snyder

    La prueba de Snyder consiste en incubar una muestra de saliva, estimulada con parafina, mezclada con verde de bromocresol y agar dextrosa, con pH de 5.0 a 37° C por tres días. Un cambio del indicador hacia el color amarillo (el color verde ya no predomina, el pH es de 4.2 o menor) en 24 horas indica una actividad de caries elevada, si no hay cambio a las 72 la actividad cariogénica es baja. (6)

    Esto se llevará a cabo para demostrar a profesores, padres de familia y alumnos, qué tanto influye la condición socioeconómica y los hábitos alimenticios y de higiene bucal en la incidencia de caries entre un estrato social mas elevado y otro de menores recursos. (7) Con todo esto se pretendió crear conciencia para que se mejoren los hábitos de higiene bucal en los niños, sin importar el nivel socioeconómico del que provengan, y así tratar de erradicar en mayor número el índice de caries en niños
    Se ha demostrado que existe un polimorfismo genético de la saliva, dichos factores biológicos, como la nutrición, así como características fisiológicos especificas se pueden modificar su contenido y función además se presenta una variación individual que influyen en la prevalecía de caries dental y otras enfermedades dentales. (8) establecimiento de un rango de valores normales presenta el pase inicial para determinar dichas variaciones individuales. A pesar de esto poco se conoce de las características fisiológicas y biológicas que determinan la composición de la saliva en diferentes poblaciones

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  65. fatima hernandez 84514
    Test de Alban

    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.

    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde original del medio virando al amarillo.

    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:

    1. Se retira del refrigerador (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en que se vayan a utilizar.

    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el tubo con tapón de rosca.

    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.

    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la profundidad del cambio de color.

    La lectura se realiza a las 24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.

    0…..No hay cambio de color

    1…..Cambia 1/4 del tubo

    2…..El viraje abarca 1/2 tubo

    3…..Hasta 3/4 del tubo

    4…..Cambia de color todo el tubo

    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza lentamente.

    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa…), esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor. Esta prueba es muy útil para:

    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y dieta.

    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede “ver” sus progresos.

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  66. Actualmente el recuento de Estreptococos mutans

    se usa como ayuda diagnóstica para seleccionar grupos de pacientes con riesgo de caries. Recuentos superiores a 100 000 UFC/mL de Estreptococos en saliva, se consideran indicadores de riesgo de caries, y recuentos salivales más bajos concuerdan con una tendencia mínima a contraer esta enfermedad. 17,18 Los altos grados de infección por Estreptococo mutans (>106 UFC ´ >105 mL/saliva), significan elevado riesgo de caries y de transmisión del microorganismo.

    Los lactobacilos

    se relacionan con la progresión de la lesión cariosa en corona y/o raíz. El alto grado de infección por lactobacilos (>106 UFC lactobacilos/mL de saliva), se relaciona con elevada actividad de caries y con la elevada ingestión de carbohidratos fermentables.

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  67. fatima hernandez 84514
    CRT bacteria

    Prueba para determinar el volumen de Estreptococos mutans y lactobacilos en la saliva y la placa

    Un elevado volumen de Estreptococos mutans y/o lactobacilos es indicativo de un elevado nivel de riesgo de caries. Si los factores de protección no son efectivos, las lesiones se desarrollarán. CRT bacteria proporciona información fundamental antes de que se puedan detectar cambios en las estructura del diente. Como resultado de ello, tiene la posibilidad de introducir medidas para contrarrestarla de forma adecuada en una fase temprana. La prueba biológica probada CRT bacteria le permite identificar con claridad y determinar de forma semicuantitativamente la bacteria cariogénica.
    Indicaciones

    Determinación de Estreptococos mutans y lactobacilos en la saliva para valorar el nivel de riesgo de caries

    Ventajas

    Identificación de Estreptococos mutans y lactobacilos
    Alta selectividad
    Resultados fiables

    Beneficios para el equipo de profesionales

    Prueba exhaustiva para determinar el nivel de riesgo de caries
    La base para el tratamiento determinado
    Intervalos de refuerzo individualizados para el mantenimiento de los dientes a largo plazo

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  68. fatima hernandez 84514
    FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROOGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

    A) Fisicoquímicos;
    B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
    C) Nutricionales;
    D) Protectores del Hospedador y
    E) Antagónicos Bacterianos.

    Mientras que en los Factores Fisicoquímicos encontramos PH: El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano.

    Aún así es la saliva en la que ejerce la función amortiguadora más importante para neutralizar la producción de ácidos por los microorganismos. Los reguladores salivales contienen, entre otros, y carbonatos, fosfatos, y proteínas ricas en y histidina que es un aminoácido con capacidad tampón.

    La adhesión consiste en el fenómeno de unión que se establece entre los microorganismos y los tejidos del hospedador, lo que permite la colonización de estos últimos.

    La agregación y la coagregación son los procedimientos, que poseen los microbios, de las mismas con diferentes especies relativamente para adherirse entre sí dando origen a la formación de microcolonias o acumulaciones que fortalecerán y estabilizarán la colonización determinada por la adhesión en sentido estricto. Es más, bacterias sin capacidad para adherirse a ciertos tejidos podrán hacerlo a los mismos mediante su coagregación como otras que sí la tienen.

    Cualquiera de estos tres procesos son claros determinantes de ecológicos que contribuyen a un cierto grado de especificidad y diversidad bacteriana en algunos ecosistemas primarios orales, a la formación de placas y al desarrollo de enfermedades. El fenómeno coagregativo es muy frecuente en la cavidad oral y tiene gran significación ecológica y patológica, ya que es, en buena medida, el responsable de la formación de placas dentales y de las típicas imágenes en mazorcas de maíz, pilosas y mixtas en las mismas.

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  69. FACTORES NUTRICIONALES

    La microbiota oral obtiene sus nutrientes de tres fuentes distintas: de los tejidos o secreciones del hospedador (fuentes endógenas), de otros microorganismos (fuentes bacterianas) y de la dieta (fuentes exógenas).

    Fuentes endógenas: el medio nutricional del surco gingival es muy distinto de los de la mucosa oral, el dorso de la lengua o el de las superficies dentales supragingivales. En estas últimas, las sustancias nutritivas provienen de la saliva, y en el primero del líquido crevicular.

    Fuentes exógenas: generalmente, el aporte exógeno más importantes de la microbiota oral está representado por la sacarosa y tiene además una notable significación ecológica. Gracias a ella, las bacterias sintetizan polisacáridos de reserva tanto intra como extracelulares y su fermentación, aparte de la producción de ácidos desmineralizantes, descienda el PH limitando el desarrollo de los microorganismos sensibles.

    FACTORES PROTECTORES DEL HOSPEDADOR

    Son todos aquellos que de alguna forma limitan, por parte del hospedador, la multiplicación, el establecimiento y la penetración de los microorganismos, contribuyendo al estado de salud de la cavidad oral.

    ➢ Integridad de la mucosa y dientes
    ➢ Descamación celular
    ➢ Masticación, deglución y succión
    ➢ Tejidos linfoides
    ➢ Saliva
    ➢ Líquido crevicular


    FACTORES ANTAGÓNICOS BACTERIANOS

    En un ecosistema como la cavidad oral en el que conviven multitud de microorganismos, no es infrecuente que se produzcan interacciones que pueden ser perjudiciales para algunos de ellos. Muchas no han podido ser detectadas por la sencilla razón de que las bacterias afectadas, al ser eliminadas, no han dejado constancia de su residencia. A veces, los efectos no son absolutos, pero es evidente que pueden actuar como determinantes ecológicos especialmente sobre microorganismo sensibles próximos.
    Las consecuencias del descontrol en los factores protectores y antagónicos bacterianos es un sobrecrecimiento que puede llevar a patologías como:

    Infección pulpar: Favorecida por caries, traumatismos, infecciones adyacentes de otras piezas... etc.
    Abscesos periapicales: Infección y formación de absceso en el ápice del diente, generalmente precedido por una infección pulpar.
    Alveolitis: Infección de los septos óseos o de los alveolos, posterior a una extracción dentaria.

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  70. microbiota oral
    La cavidad oral posee una microbiota característica, debido a las condiciones peculiares de nutrientes, pH y humedad, y muy variable en función de distintos factores que confluyen localmente, como la caries, la existencia de dientes, la zona, etc… Un ejemplo es la diferente composición que existe entre la placa supragingival y la placa subgingival, situadas por encima y por debajo de las encías respectivamente.
    Tras el desarrollo de los dientes en el niño, nuevas especies del género Streptococcus (ej. S. sanguis, S. mutans) colonizan la superficie dental. Estas especies no colonizan antes la cavidad oral debido a que con anterioridad al desarrollo de la dentición no existían elementos (ej. superficie dura de hidroxiapatita recubierta de la llamada película adquirida) que permitan la adherencia de estas especies, ilustrandonos así del grado de colonización específica desarrollada a lo largo de la evolución, es decir de la convivencia simbiótica entre microorganismo y hospedador.

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  71. Keneidy 87838

    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.(8,11)

    Por lo tanto, la composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total.(11) Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental.(17)

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección.( 10)

    El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min.(8)

    Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.(18)

    La tasa de flujo salival es uno de los puntos más importantes para determinar el riesgo a la caries y la cual puede ser modificada por diferentes factores.(19) Una tasa de flujo salival adecuada es esencial para que la salud bucal se mantenga pero este equilibrio puede interrumpirse al alterarse el balance entre el huésped y los microorganismos, dando lugar al crecimiento excesivo de las bacterias. Como se hizo notar anteriormente, hay factores que influyen en el flujo salival. Antes que nada está el sistema nervioso y ciertos factores tanto biológicos como ambientales que afectan el flujo salival.

    En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación.(20)

    Existen muchos factores que tienen influencia sobre la tasa de flujo salival estimulada, cuyo valor promedio es de 7 ml/min aproximadamente. Estos factores son: el estímulo mecánico, el vómito, los estímulos gustativo y olfativo, el tamaño de la glándula y la edad. (11)

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  72. Keneidy87838

    Utilizamos un recipiente calibrado en mililitros (ml) para la recolección de la saliva. Una vez observados los pasos expuestos anteriormente, se manda al paciente a acumular saliva durante un período total de cinco (5) minutos en la boca sin tragar. Para la obtención de los datos de Flujo Salival No Estimulado se dividió la cantidad de ml de saliva obtenida en el recipiente calibrado entre 5 con lo cual obtenemos el Flujo Salival no Estimulado por minuto.

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  73. Keneidy87838

    FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROOGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

    A) Fisicoquímicos;
    B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
    C) Nutricionales;
    D) Protectores del Hospedador y
    E) Antagónicos Bacterianos.

    Mientras que en los Factores Fisicoquímicos encontramos PH: El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano.

    Aún así es la saliva en la que ejerce la función amortiguadora más importante para neutralizar la producción de ácidos por los microorganismos. Los reguladores salivales contienen, entre otros, y carbonatos, fosfatos, y proteínas ricas en y histidina que es un aminoácido con capacidad tampón.

    La adhesión consiste en el fenómeno de unión que se establece entre los microorganismos y los tejidos del hospedador, lo que permite la colonización de estos últimos.

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  74. Keneidy87838

    Prueba para estrepococos mutando

    Un elevado volumen de Estreptococos mutans y/o lactobacilos es indicativo de un elevado nivel de riesgo de caries. Si los factores de protección no son efectivos, las lesiones se desarrollarán. CRT bacteria proporciona información fundamental antes de que se puedan detectar cambios en las estructura del diente. Como resultado de ello, tiene la posibilidad de introducir medidas para contrarrestarla de forma adecuada en una fase temprana. La prueba biológica probada CRT bacteria le permite identificar con claridad y determinar de forma semicuantitativamente la bacteria cariogénica.
    Indicaciones

    Determinación de Estreptococos mutans y lactobacilos en la saliva para valorar el nivel de riesgo de caries

    Ventajas

    Identificación de Estreptococos mutans y lactobacilos
    Alta selectividad
    Resultados fiables

    Beneficios para el equipo de profesionales

    Prueba exhaustiva para determinar el nivel de riesgo de caries
    La base para el tratamiento determinado
    Intervalos de refuerzo individualizados para el mantenimiento de los dientes a largo plazo


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    Respuestas
    1. Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

      A) Fisicoquímicos;
      B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
      C) Nutricionales;

      La función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH.
      El flujo y el pH salival, cuando presentan bajas puntuaciones se relacionan con un alto riesgo e indicarían la necesidad de implementar medidas preventivas, las cuales en ningún caso modificarán las puntuaciones resultantes, sino contrarrestar sus efectos negativos. Esta medición se realizará 2 veces en el paciente Integral (en la etapa de diagnóstico y para el alta básica) y 1 vez para el paciente de Mantención (en su diagnóstico).

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  75. Keneidy 87838


    Actualmente el recuento de Estreptococos mutans

    se usa como ayuda diagnóstica para seleccionar grupos de pacientes con riesgo de caries. Recuentos superiores a 100 000 UFC/mL de Estreptococos en saliva, se consideran indicadores de riesgo de caries, y recuentos salivales más bajos concuerdan con una tendencia mínima a contraer esta enfermedad. 17,18 Los altos grados de infección por Estreptococo mutans (>106 UFC ´ >105 mL/saliva), significan elevado riesgo de caries y de transmisión del microorganismo.

    Los lactobacilos

    se relacionan con la progresión de la lesión cariosa en corona y/o raíz. El alto grado de infección por lactobacilos (>106 UFC lactobacilos/mL de saliva), se relaciona con elevada actividad de caries y con la elevada ingestión de carbohidratos fermentables.

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  76. Keneidy87838

    FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROOGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

    A) Fisicoquímicos;
    B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
    C) Nutricionales;
    D) Protectores del Hospedador y
    E) Antagónicos Bacterianos.

    Mientras que en los Factores Fisicoquímicos encontramos PH: El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano.

    Aún así es la saliva en la que ejerce la función amortiguadora más importante para neutralizar la producción de ácidos por los microorganismos. Los reguladores salivales contienen, entre otros, y carbonatos, fosfatos, y proteínas ricas en y histidina que es un aminoácido con capacidad tampón.

    La adhesión consiste en el fenómeno de unión que se establece entre los microorganismos y los tejidos del hospedador, lo que permite la colonización de estos últimos.

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  77. Keneidy87838

    FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROOGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

    A) Fisicoquímicos;
    B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
    C) Nutricionales;
    D) Protectores del Hospedador y
    E) Antagónicos Bacterianos.

    Mientras que en los Factores Fisicoquímicos encontramos PH: El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano.

    Aún así es la saliva en la que ejerce la función amortiguadora más importante para neutralizar la producción de ácidos por los microorganismos. Los reguladores salivales contienen, entre otros, y carbonatos, fosfatos, y proteínas ricas en y histidina que es un aminoácido con capacidad tampón.

    La adhesión consiste en el fenómeno de unión que se establece entre los microorganismos y los tejidos del hospedador, lo que permite la colonización de estos últimos.

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  78. Keneidy87838


    En el proceso
    carioso se presupone que
    la saliva sea un agente influyente; razón por
    la cual constituye el estudio de este fluido
    un factor importante en la búsqueda de elementos concretos que permitan relacionar las propiedades y composición química de
    la saliva con enfermedades que afecten la
    cavidad bucal,así como el empleo de la
    saliva para efectuar diagnósticos de utilidad
    práctica no sólo para el odontólogo sino
    para el médico en general.

    Entre las pruebas utilizadas para evaluar
    la actividad de caries y que están relacionadas directamente con la saliva se encuentran la determinación de la tasa de
    flujo y la viscosidad salival.
    El fundamento para la evaluación de
    estos aspectos se basa en la observación de
    que los pacientes con saliva espesa y viscosa casi siempre tienen una experiencia de caries mayor que el promedio.
    Por otra
    parte estudios realizados han demostrado
    una mayor incidencia de caries asociada
    con disminución del flujo salival en pacientes con ausencia congénita de glándulas salivales, o una menor salivación a causa de
    determinadas enfermedades o al uso
    prolongado de drogas
    depresoras de la salivación, tales como tranquilizantes,
    antihistamínicos, antidepresivos,
    etc, que
    afectan el sistema nervioso autónomo y
    bloquean parcialmente la transmisión de los
    impulsos nerviosos a las glándulas saliva
    les.

    La sequedad bucal puede ser también el
    resultado de radiación excesiva de las
    glándulas salivales durante la radioterapia.
    Variaciones en la tasa de flujo influyen
    en muchos de los componentes químicos y
    propiedades de la saliva, entre las que se
    encuentran la de mantener y proteger las
    estructuras de la cavidad bucal debido a
    que contribuye a la remoción de los residuos alimentarios de los dientes(efecto
    limpiador);además coayuda con iones minerales y componentes inorgánicos al esmalte de los dientes y contiene
    buffers
    que
    ayudan a la neutralización de los ácidos que
    se forman en la placa.

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  79. Keneidy87838

    Tras el desarrollo de los dientes en el niño, nuevas especies del género Streptococcus (ej. S. sanguis, S. mutans) colonizan la superficie dental. Estas especies no colonizan antes la cavidad oral debido a que con anterioridad al desarrollo de la dentición no existían elementos (ej. superficie dura de hidroxiapatita recubierta de la llamada película adquirida) que permitan la adherencia de estas especies, ilustrandonos así del grado de colonización específica desarrollada a lo largo de la evolución, es decir de la convivencia simbiótica entre microorganismo y hospedador.

    La accesibilidad a los distintos ecosistemas presentes en la cavidad oral facilita el estudio de la interacción hospedador-parásito y de su evolución.

    La microbiota oral es compleja:
    Cocos gram positivos: Streptococcus viridans, S. mutans, S. sanguis, S. salivarius, S. oralis y S. mitis.
    En menor medida: Streptococcus pyogenes, Enterococcus, Staphylococcus, Micrococcus y los anaerobios Peptostreptococcus y Peptococcus.
    Cocos gram negativos: especies del género Neisseria y Veillonella. Tanto aerobios como anaerobios.
    Bacilos gram positivos: Actinomyces, Lactobacillus, Bifidobacterium, C. matruchotii, Rothia dentocariosa y otros llamados difteroides o difteromorfos.
    Bacilos gram negativos: Prevotella, Porphyromonas, Fusobacterium, Capnocytophaga, Actinobacillus, Eikenella, Campylobacter y Haemophilus.
    Otros: Espiroquetas comensales, hongos como Candida, Mycoplasma y escasos protozoos como Trichomonas tenax y Entamoeba gingivalis.

    Es importante señalar que la microbiota oral es cambiante en un mismo ecosistema oral, este proceso se conoce como sucesión microbiana, que es la sustitución de unos organismos por otros, existen dos tipos: alogénica y autogénica.
    La alogénica se produce por cambios en el habitat de tipo no microbiano como el nacimiento, la erupción de los primeros dientes, la vida adulta, la caída de los dientes, el uso de prótesis dentales, etc….
    La autogénica consiste en la sustitución de unos microorganismos por otros más adaptados al ambiente cambiado por los primeros colonizadores debido al consumo de nutrientes, acumulación de productos de desecho excretados, cambios de pH, etc. que propician la colonización por nuevas especies más adapatadas a las nuevas condiciones ambientales del ecosistema microbiano.

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  80. Keneidy87838


    Determinacion de la Saliva No Estimulada

    La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada. La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos. Es muy importante ya que esta realacionada con el tiempo de aclaramiento de azucar y acidos en la boca.

    En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación

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  81. SANTA GUEVARA 87473

    La saliva es una secreción compleja proveniente de las glándulas salivales mayores en el 93% de su volumen y menores
    en el 7% restante. El 99% de la saliva es agua mientras que el 1% restante está constituido por moléculas orgánicas e
    inorgánicas. Si bien la cantidad de saliva es importante, también lo es la calidad de la misma.
    Se revisará los componentes de la saliva y sus funciones en el mantenimiento de la salud oral los principales factores causales
    que alteran la secreción salival, se comentará la importancia de la saliva en el desarrollo de la enfermedad de caries y en la
    formación de la placa bacteriana, y se analizará su papel como material de ayuda para el diagnóstico de algunas patologías.
    Las variaciones en el flujo salival pueden verse afectadas por múltiples factores fisiológicos y patológicos, de forma
    reversible o irreversible. Juega un papel fundamental en el mantenimiento de la integridad de las estructuras bucales, en
    la vida de relación, en la digestión y en el control de infecciones orales. El papel de la saliva en la protección frente a la
    caries podemos concretarlo en cuatro aspectos, dilución y eliminación de los azúcares y otros componentes, capacidad
    tampón, equilibrio entre la desmineralización / remineralización y acción antimicrobiana.

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  82. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #1)

    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.


    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un
    examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la
    actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta
    enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera
    hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población
    en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no
    la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a
    las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada
    individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con
    modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.

    Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test
    que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque
    no por ello hayan dejado de ser útiles.

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  84. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #2)

    CONTENIDO:

    Pruebas salivares en la identificación del
    riesgo de caries. Determinación del flujo salivar.
    Capacidad tampón de la saliva.
    Determinar y cuantificar en la saliva la población de los microorganismos con más potencialidad cariogénica ( estreptococo mutans y lactobacilos)

    Los test basados en la saliva no diagnostican caries, pero sirven para informarnos del riesgo de caries:


    Test de Alban.
    Cuantificación de Lactobacillus y estreptococos del grupo

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  85. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #3)

    OBEJETIVOS:

    . Describir cómo se realizan en clínica los siguientes tests:
    - Determinación de flujo salivar (estimulado y no estimulado)
    - Capacidad tampón (CRT bacteria®)
    - Test de Alban.
    - Recuentos de Lactobacillus y estreptococos del grupo mutans (CRT
    bacteria®)
    3. Evaluar los resultados de dichos tests de actividad de caries.
    4. Usar los tests de actividad de caries para ayudar a determinar el riesgo de caries
    en un compañero.
    5. Estimar las medidas preventivas que crea pertinente instaurar en función de los
    resultados obtenidos.

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  86. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #4)

    DESARROLLO TEORICO

    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un
    examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la
    actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta
    enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera
    hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población
    en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no
    la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a
    las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada
    individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con
    modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.
    Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test
    que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque
    no por ello hayan dejado de ser útiles.
    * El test de Alban y los recuentos microbianos son pruebas que sirven para
    controlar el estado del medio oral del paciente, por lo que deben ser repetidos periódicamente hasta conseguir bajas puntuaciones.
    * El flujo salivar y la capacidad tampón, por el contrario, cuando presentan
    bajas puntuaciones indican alto riesgo y necesidad de implantar medidas
    preventivas, las cuales en ningún caso tienen como fin modificar las puntuaciones
    de estos test, sino contrarrestar los efectos negativos de estas puntuaciones.

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  87. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #5)

    PRIMER CICLO DE PRACTICAS

    * El flujo salivar y la capacidad tampón, por el contrario, cuando presentan
    bajas puntuaciones indican alto riesgo y necesidad de implantar medidas
    preventivas, las cuales en ningún caso tienen como fin modificar las puntuaciones
    de estos test, sino contrarrestar los efectos negativos de estas puntuaciones.

    DETERMINACIÓN DEL FLUJO SALIVAR

    Hay una serie de medicamentos (antihistamínicos, anticolinérgicos,
    antiparkinsonianos, antidepresivos...) y estados patológicos (radioterapia de cabeza
    y cuello, diabetes mellitus, sarcoidosis, ansiedad, estrés. drogadicción...) que
    conllevan una disminución del flujo salivar, que es importante conocer, ya que
    estos pacientes que presentan hiposalivación y xerostomía son de alto riesgo de
    caries.

    Este test está especialmente indicado en aquellos pacientes que tienen
    síntomas de xerostomía: el paciente manifiesta sequedad de boca, tiene los labios
    resecos y, a la exploración, no acumula saliva en el suelo de la boca. En
    condiciones normales no puede considerarse como test de actividad de caries.

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  88. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #6)

    DETERMINACIÓN DE LA SALIVA NO ESTIMULADA

    La determinación de saliva no estimulada tiene mucha importancia ya que
    está relacionada con el tiempo de aclaramiento de azúcar y ácidos de la boca.

    La recogida de saliva no estimulada o en reposo se realiza con el paciente
    sentado en posición relajada, con los codos apoyados en las rodillas. Se debe
    evitar cualquier movimiento de las mejillas o de la mandíbula; la lengua se apoya
    en las superficies linguales de los incisivos superiores. En esta posición, el paciente
    dobla la cabeza hacia delante y va dejando gotear la saliva pasivamente sin tratar
    de escupir ni masticar.

    La saliva se recoge en un tubo graduado durante 5 minutos. Los resultados
    se expresan en ml/min, existiendo amplias variaciones entre las personas.
    TASA DE SECRECIÓN NORMAL........................................: 0.25-0.35ml/min
    TASA DE SECRECIÓN BAJA ................................................: 0.1-0.25ml/min

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  89. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #7)

    DETERMINACIÓN DE LA SALIVA ESTIMULADA

    Esta tasa es más práctica y, por lo tanto, es a menudo realizada en la
    clínica. El paciente debe masticar una cápsula de parafina estéril de
    aproximadamente 1 gr. (se empleará parafina con un punto de fusión de 42-44°C),
    e ir recogiendo toda la saliva que segregue en un tubo graduado durante 5
    minutos. Es preferible desechar la saliva producida en los 2 primeros minutos y
    empezar a contar a partir de ese momento; de esta forma se arrastran restos
    residuales que queden en boca. Se puede reducir la formación de espuma TESTS DE ACTIVIDAD DE CARIES
    29
    introduciendo el tubo graduado en un recipiente con hielo o añadiendo una gota de
    octanol.
    El resultado se expresa en ml/min y, al igual que ocurre con la saliva no
    estimulada, la tasa es muy variable entre diferentes personas.
    TASA DE SECRECIÓN NORMAL.......................................: >1ml/min.
    TASA DE SECRECIÓN BAJA.......................................... : <0.7ml/min.

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  90. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #8)

    MEDIDAS DE ACTUACION

    Si el déficit salivar es funcional y no hay lesión estructural de las glándulas
    salivares, es posible estimular el flujo salivar administrando pilocarpina.
    Cloruro de pilocarpina.................................................................: 0.3 gr.
    Agua destilada.............................................................................: 15 ml.

    Tomar 5 gotas tres veces al día al comienzo de las comidas, y aumentar la
    dosis 1 gota por día hasta ingerir 8-10 gotas por dosis. También se puede utilizar
    una solución acuosa al 0.2% de pilocarpina oftálmica. La pilocarpina produce
    transpiración y aumento de la motilidad gástrica.

    Si el déficit de secreción salivar se debe a atrofia de las glándulas es muy
    difícil estimular el flujo salival. Los pacientes en estos casos pueden enjuagarse la
    boca frecuentemente con agua, agua con glicerina o agua con bicarbonato sódico
    (1 cucharada de té por litro). También se ha propuesto un "sustituto" de la saliva,
    así como goma de mascar hidrófila que alivia la sintomatología de estos pacientes. PRÁCTICA 2
    30

    LOS PACIENTES QUE DE FORMA PERMANENTE TIENEN DISMINUIDO
    EL FLUJO SALIVAR DEBEN HACER TODOS LOS ESFUERZOS PARA
    PRESERVAR LOS DIENTES MEDIANTE CONTROL DE PLACA,
    CONTROL DE DIETA Y USO DIARIO DE FLÚOR O
    FLÚOR+CLORHEXIDINA.

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  91. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #9)

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD TAMPON DE LA SALIVA

    Los sistemas tampón salivares corrigen las variaciones de pH causadas por
    los cambios de concentración de iones ácidos o básicos producidos, por ejemplo,
    por la fermentación de los azúcares.

    En la saliva, dicha amortiguación es llevada a cabo por el sistema ácido carbónico/bicarbonato, sistema fosfato y, en menor, medida por las proteínas
    salivares. De todos ellos, el bicarbonato es el sistema neutralizante más importante
    de la saliva.

    Este sistema tampón se basa en el siguiente equilibrio:
    CO2 + H2
    O <======> H2
    CO3 <======> HCO3
    -
    + H+
    H2
    CO3 ........ Ácido carbónico
    HCO3 ......... Ion bicarbonato
    CO2 ........... Dióxido de carbono

    Aunque existen diversos métodos, la determinación de la capacidad tampón
    se realiza en la actualidad mediante algunos sistemas simplificados que se basan
    en el método de Ericsson que se describe a continuación: A 1ml de saliva
    estimulada se añaden 3 ml. de HCL 0.005 M junto con una gota de octanol (impide
    la formación de espuma). La mezcla se coloca en un sistema de aireación que
    burbujea aire lentamente a través de la saliva. Después de 20 min. se mide el pH.

    Los H+
    del HCL desvían la reacción a la izquierda formándose CO2 que se libera
    casi totalmente debido a la aireación. El pH final es un fiel reflejo de la
    concentración original de HCO3. De esta forma se obtienen valores que están
    relacionados con la capacidad tampón de ambos sistemas (bicarbonato y fosfato),
    ya que éstos actúan juntos.

    El valor de la capacidad tampón es un parámetro que, aunque puede variar,
    es razonablemente estable, teniendo su mayor importancia clínica, en relación con
    el riesgo de caries, cuando los valores son inferiores a 5.5.

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  92. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #10)

    DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD TAMPÓN POR EL SISTEMA CRT BUFFER.

    Se basa en el método de Ericsson. La mayor diferencia con respecto a él
    estriba en que se suprime el paso de la corriente de aire; y se obtienen casi los
    mismos resultados que con el método original.

    El equipo consta de una tira de papel en cuyo extremo lleva una almohadilla
    impregnada con la solución ácida y con el indicador de pH, cápsulas de parafina y
    pipetas desechables.

    1. Utilizamos saliva estimulada.
    2. Colocamos una tira soporte en una superficie firme y absorbente con la
    almohadilla tratada hacia arriba.
    3. Pipeteamos una gota de saliva estimulada en la almohadilla. La gota
    debe ser lo suficientemente grande para cubrirla entera.
    4. Esperamos 5 min. de reacción antes de la lectura.

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  93. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #11)

    Evaluación

    Se realiza comparando el color final de la almohadilla con una escala de
    colores de 3 valores diferentes.
    BAJO: pH <4.......... Color amarillento o marrón
    MEDIO: pH 4.5-5.5..... Color verde
    ALTO: pH >6.......... Color azul

    Puede ocurrir que el color no esté bien definido, o bien aparezcan varios
    colores; en este caso se debe interpretar la capacidad buffer por su valor inferior.
    Esta reacción en forma de manchas sobre la almohadilla puede deberse a que la
    mucina salivar impide una buena impregnación de ésta.

    Los pacientes con valores muy bajos son considerados pacientes de alto
    riesgo de caries. No hay documentación clínica que nos permita aclarar el posible
    efecto protector en aquellos casos con una alta capacidad tampón.

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  94. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #12)

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD ACIDIFICANTE DE LA SALIVA

    METODO DE SNYDER

    Objetivos:

    El estudiante debe ser capaz de:

    1. Relacionnar la produccion de acido por algunas bacterias de la boca con la susceptibilidad a la caries.

    2. Nombrar los principales microorganismos relacionados con la caries dental.

    3. Conocer la constitucion del medio de Snyder:

    INTRODUCCION:

    En la aparicion de la caries hay que tener en cuenta:

    -S.Mutans se une al esmalte, metaboliza disacaidos y acidifica el Ph.
    -Conforme mas se acidifica, mas deificil le resulta crecer, pero:

    -Lactobacillus comienza a crecer y a acidificar mas el medio; Destruccion del esmalte= caries.

    El medio de Snyder mide la produccion de acidos a partir del metabolismo de la glucosa por los microorganismos de la saliva.

    Esta compuesto por: Glucosa, purpura de bromocresol, triptosa, CLNy, y agar y su Ph es de 4.8. Cuando desciende a 4.6 o menos el indicador vira a amarillo.

    Mareriales y medios que se usan en la practica:

    Medio de Snyder en tubo.
    Placa de petri esteril.
    Pipeta de bulbo esteril.
    Siembra del medio de Snyder.
    Calentar el medio de Snyder hasta que se licue.
    Recoger la saliva en una placa de petri.
    Con la pipeta, homgeneizar la saliva.
    Pipetear 0.2 ml. de saliva en el medio de 45 grados celsius.
    Mover el ubo entre las palmas de las manos para mezclar la saliva con el medio.
    Solidificar en posicion vertical.
    Observar a las 24 y 48 horas.



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  95. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #13)

    TEST DE ALBAN

    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se
    basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva
    estimulada es inoculada en el medio de Snyder.

    Dicho medio, de pH 4.7, contiene,
    entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.

    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa
    produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde
    original del medio virando al amarillo.

    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de
    rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:

    1. Se retira de la nevera (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de
    realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en
    que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal
    estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el
    tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.

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  96. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #14)

    TEST DE ALBAN
    EVALUACION

    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la
    profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las
    24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0.....No hay cambio de color
    1.....Cambia 1/4 del tubo
    2.....El viraje abarca 1/2 tubo
    3.....Hasta 3/4 del tubo
    4.....Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza
    lentamente.

    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de
    hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa...), esto no siempre es así;
    por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor.
    Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y
    dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede
    "ver" sus progresos.

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  97. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #15)

    RECUENTOS SALIVARES DE LACTOBACILLUS ACIDOPHILLUS

    Lactobacillus, al igual que estreptococos del grupo mutans, son
    microorganismos que están estrechamente relacionados con la caries dental.
    Concretamente Lactobacillus parece estar vinculado con la progresión de caries en
    dentina. La dificultad clínica de efectuar recuentos microbianos en placa bacteriana
    ha propiciado que sean los recuentos en saliva los que se hayan protocolizado y
    adaptado para su uso en el consultorio dental.

    El método clásico o estándar para determinar el número de Lactobacillus
    consistía en emplear placas de Petri con una determinada cantidad de medio
    selectivo, que en este caso es el agar Rogosa.

    La saliva estimulada era diluida de
    forma seriada y, tras la inoculación en el medio y posterior incubación, se realizaba
    el recuento, refiriéndose el resultado como número de colonias/ml de saliva. Este
    sistema era inviable en clínica.

    En la actualidad hay varios sistemas simplificados de detección y
    enumeración, que tienen la ventaja de poderse usar en el consultorio dental y de
    que los resultados pueden ser mostrados al paciente, lo cual tiene gran interés en
    la motivación de éste.

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  98. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #16)

    RECUENTOS SALIVARES DE STREPTOCOCOS MUTANS

    La forma clásica de realizar recuentos salivares de esta bacteria es similar a
    lo descrito anteriormente para Lactobacillus, con la única diferencia del medio
    selectivo que en este caso es el agar Mitis Salivarius suplementado con sacarosa y
    bacitracina.

    Para hacer asequible este test en la clínica odontológica se han desarrollado
    sistemas más sencillos que se pueden emplear en el consultorio y se correlacionan
    bien con la técnica convencional en agar. Se describe a continuación el CRT®
    bacteria).

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  99. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #17)

    CRT BACTERIA (PASO A PASO)

    1.Provision de parafina al paciene.
    2.Paciente salivando dentro de un recipiente.
    3.Frasco con medio de cultivo y pastilla de bacitracina.
    4.Frasco con pastilla de bacitracina.
    5.Tapar y rotular
    6.Se toma una muestra de saliva vertida.
    7. Se humedece una sola superficie del porta agar.
    8. Humedeces ambas superficies del porta agar con un frasco.
    9.Se coloca el porta agar en el frasco de pruebas y se cierra.
    10.Se mantiene el tubo verticalmente durante 48 horas en una estufa a 37 grados celsius.
    11. Se compara el resultado con la cartilla de valoracion; el lado azul del agar es para steptococcus mutans y el lado verde del agar es para lactobacillus.


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  100. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #18)

    CRT® BACTERIA PARA LB y SM (Vivadent, Schaan, Liechtenstein)

    Este sistema consta de una lengüeta de plástico recubierta por ambos lados
    por medios selectivos y conectada a un tapón de rosca el cual cierra un tubo transparente, quedando el dispositivo seguro para su almacenamiento e
    incubación, conservándose estéril y húmedo. Una de las superficies de la lengüeta
    está cubierta por agar Rogosa, para recuentos de LB (color verde) y en la otra cara
    con agar Mitis Salivarius Bacitracina para recuentos de SM (color azul oscuro). El
    kit también incorpora cápsulas de parafina, tabletas de NaHCO3 y etiquetas de
    identificación. La dinámica de utilización es la siguiente:

    1. Se recoge saliva estimulada como ya se ha visto anteriormente.
    2. Desenroscar el tapón, y extraer el porta agar del interior del tubo.
    3. Se coloca una tableta de NaHCO3 en la base del tubo.
    4. Retirar con cuidado las láminas protectoras de ambas superficies de agar,
    teniendo cuidado de no tocar el mismo.
    5. Se vuelca la saliva con cuidado sobre las dos superficies del agar con ayuda
    de una pipeta, sin arañar las mismas y de forma que queden humedecidas.
    En esta operación se mantiene la lengüeta en posición vertical y se deja
    gotear la saliva sobrante.
    6. Eliminar las últimas gotas de saliva dejando escurrir un ángulo del borde
    inferior de la lengüeta con el agar sobre papel absorbente limpio y enroscar
    el tapón y cerrarlo bien.
    7. Se identifica el tubo con una etiqueta adhesiva y se incuba a 36±1ºC
    durante 48 horas en posición vertical.

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  101. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #19)

    Interpretación
    La lectura de los resultados se realiza comparando la densidad de
    crecimiento de colonias de Lactobacillus y de estreptococos del grupo mutans de
    las lengüetas con una tabla de densidad ya establecida. La colonias de
    Lactobacillus son blanquecinas o transparentes y las de estreptococos del grupo
    mutans son de color azul oscuro casi negras. Los resultados se interpretan como
    unidades formadoras de colonias/ml de saliva (ufc/ml). La lectura de la prueba es
    más fácil si se examina bajo luz reflejada. Debemos comparar densidad de
    crecimiento y no el área de las colonias ya que nos podemos encontrar pocas
    colonias pero muy grandes.
    RECUENTO ALTO....... >100 000 ufc/ml saliva
    RECUENTO BAJO....... <100 000 ufc/ml saliva

    Los recuentos altos de Lactobacillus indican un número elevado de caries
    abiertas o de obturaciones desbordantes. Si se procede a tapar las lesiones y los
    valores se mantienen elevados, indica elevada frecuencia de ingestión de hidratos
    de carbono.
    ESTE TEST TIENE UTILIDAD PARA EVALUAR PROGRAMAS CONTROL DE
    PLACA Y DIETA.
    LOS RECUENTOS ALTOS DE ESTREPTOCOCOS DEL GRUPO MUTANS
    INDICAN UN RIESGO MICROBIOLÓGICO ALTO DE CARIES.
    Esta contraindicado realizarlos durante tratamientos con antibióticos
    (esperar al menos 14 días), y si se utilizan colutorios antimicrobíanos se debe
    esperar 12 horas. Al desecharlos no se debe olvidar que son cultivos microbianos
    que deben ser manejados con cuidado.

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  102. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #20)

    Interpretación
    La lectura de los resultados se realiza comparando la densidad de
    crecimiento de colonias de Lactobacillus y de estreptococos del grupo mutans de
    las lengüetas con una tabla de densidad ya establecida. La colonias de
    Lactobacillus son blanquecinas o transparentes y las de estreptococos del grupo
    mutans son de color azul oscuro casi negras. Los resultados se interpretan como
    unidades formadoras de colonias/ml de saliva (ufc/ml). La lectura de la prueba es
    más fácil si se examina bajo luz reflejada. Debemos comparar densidad de
    crecimiento y no el área de las colonias ya que nos podemos encontrar pocas
    colonias pero muy grandes.
    RECUENTO ALTO....... >100 000 ufc/ml saliva
    RECUENTO BAJO....... <100 000 ufc/ml saliva

    Los recuentos altos de Lactobacillus indican un número elevado de caries
    abiertas o de obturaciones desbordantes. Si se procede a tapar las lesiones y los
    valores se mantienen elevados, indica elevada frecuencia de ingestión de hidratos
    de carbono.
    ESTE TEST TIENE UTILIDAD PARA EVALUAR PROGRAMAS CONTROL DE
    PLACA Y DIETA.
    LOS RECUENTOS ALTOS DE ESTREPTOCOCOS DEL GRUPO MUTANS
    INDICAN UN RIESGO MICROBIOLÓGICO ALTO DE CARIES.
    Esta contraindicado realizarlos durante tratamientos con antibióticos
    (esperar al menos 14 días), y si se utilizan colutorios antimicrobíanos se debe
    esperar 12 horas. Al desecharlos no se debe olvidar que son cultivos microbianos
    que deben ser manejados con cuidado.

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  103. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #21)

    SEGUNDO CICLO DE PRACTICAS

    FLORA DE LA BOCA. BACTERIAS ANAEROBIAS

    Diagnostico directo y molecular de las enfermedades infecciosas:

    DIA 1:
    A) tipos de respiracion bacteriana. Medios de cultivos para anaerobios.


    B) prueba de Snyder: determinacion de la susceptibilidad a la caries.

    DIA 2:

    A) observacion de los cltivos.

    B) Diagnostico indirecto de las enfermedades infecciosas. Prueba de microaglutinacion.

    DIA 3:

    A) lectura de la prueba de Snyder.

    B) lectura e interpretacion de la prueba de microaglutinacion.

    C) diagnostico indireto: pruebas confirmatorias.

    D) diagnostico molecular.

    LOS ALUMNOS TIENEN LA OBLIGACION DE ENTREGAR POR ESCRITO, AL FINAL DEL SEGUNDO CICLO DE PRACTICAS, LAS OBSERVACIONES REALIZADAS POR LOS MISMOS A LO LARGO DE LOS DOS CICLOS DE PRACTICAS.

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  104. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #22)

    A) CULTIVO DE ANAEROBIOS

    Objetivos:
    El estudiante debe ser capaaz de:

    1. Clasificar las bacterias en relacion con el oxigenos.
    2.Conocer las tecnicas de aislamiento de las bacterias anaerobias.
    3. Conocer las tecnicas de estudio de la susceptibilidad a la caries.

    Introduccion:

    Las bacterias se clasifican de acuerdo a su tolerancia con el O2 en:

    -Anaerobias estrictas: crecen con <0.5% de presion de O2.
    -Anaerobias facultativas: tolera >3% de presion de O2.
    -Microaerofilas: crecen de 5-10% de presion de O2.
    -Aerobias estrictas: crecen con >10% de presion de O2.

    Las bacterias anaerobias constituyen la flora normal predominante en el ser humano, especialmente en la boca. El cultivo de especies anaerobias es dificil por:

    1) las dificultades tecnicas para garantizar la anaerobiosis durante la manipulacion de la muestra y su posterior cultivo.

    2)La frecuente presencia de mezclas complejas de especies anaerobias y facultaivas.

    3) los requerimientors nutricionales de medios enriquecidos.

    Para considerar un aislado bateriano como una especie anaerobia, es necesario comprobar primero que no es aerotolerante. Para ello se subcultiva en dos medios, incubando no de ellos en condiciones de anaerobiosis y el otro en aerobiosis. Trs 24 horas de incubacion se examinan las placas y e comparan los conocimientos.


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  105. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #23)

    Microorganismos que se van a procesar en la practica:

    -bacilo grampositivo anaerobio (clostridium.
    -bacilo gramnegativo anaerobio (bacteroides).


    Se sugiere que todas las muestras clínicas provenientes de sitios probables de ser colonizados por anaerobios sean cultivadas en medios para anaerobios .
    Los medios de aislamiento primario requieren de medios de cultivo líquidos y sólidos, el medio tioglicolato suplementado con Vit K, hemina y bicarbonato es ampliamente aceptado porque no requiere de incubación anaeróbica. En cuanto a los medios sólidos un número de diferentes formulaciones cumplen con las especificaciones requeridas como son: Agar Sangre+Suplementos, Agar Schaedler, Agar Brucella, Agar Sangre+ Suplemento+ Inhibidores, etc.. Estos medios son útiles para acelerar el proceso de aislamiento e identificación. Como un mínimo de medios a utilizar se recomienda la inoculación de la muestra en: tioglicolato suplementado, y una placa de Agar sangre + Suplemento , en casos de infecciones polimicrobianas se recomienda utilizar además, una placas de Agar Sangre+ Suplemento+ Inhibidores. Los medios selectivos sólidos deben inocularse abundantemente.
    Una vez inoculados los medios deben ser incubados en una atmósfera de anaerobiosis, ya sea en una jarra con generadores de gas que operan transformando el O2 en H2 y CO2 una vez que se agrega agua al generador en presencia de un catalizador de paladio.
    Alternativamente puede utilizarse una mezcla de gasen en la incubadora que está compuesta por 5-10% de H2, 5-10% CO2, 80-90% N2.
    Normalmente los cultivos deben ser incubados por un mínimo de 48 hrs. Algunos anaerobios requieren mayor tiempo, hasta 3 días para tener colonias visibles.

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    Respuestas
    1. NATALIS CARLOS
      #2011-0262
      CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #24)

      Incubacion en condiciones anaerobias:
      Las placas de agar brucella se incuban en jarras de anaerobiosis que se cierran hermeticamente con un sobre generadoren su interior. Este sobre, mediante una reaccion quimica, genera H@ y CO2 que desplazan al CO2 en el interior de la jarra.

      Siembra en medio de Tioglcolalo:
      Coger una colonia con el asa previamente esterelizada con la llama del mechero, e introducir en el tubo hasta el fondo y sacarlo. Flamear la boca del tubo antes y despues de introducir el asa.

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  106. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #25)

    PRUEBA DE SNYDER (SUSCEPTIBILIDAD A LA CARIES DENTAL)

    La prueba de Snyder consiste en incubar una muestra de saliva, estimulada con parafina, mezclada con verde de bromocresol y agar dextrosa, con pH de 5.0 a 37° C por tres días. Un cambio del indicador hacia el color amarillo (el color verde ya no predomina, el pH es de 4.2 o menor) en 24 horas indica una actividad de caries elevada, si no hay cambio a las 72 la actividad cariogénica es baja.

    Esto se llevará a cabo para demostrar a profesores, padres de familia y alumnos, qué tanto influye la condición socioeconómica y los hábitos alimenticios y de higiene bucal en la incidencia de caries entre un estrato social mas elevado y otro de menores recursos. Con todo esto se pretendió crear conciencia para que se mejoren los hábitos de higiene bucal en los niños, sin importar el nivel socioeconómico del que provengan, y así tratar de erradicar en mayor número el índice de caries en niños
    Se ha demostrado que existe un polimorfismo genético de la saliva, dichos factores biológicos, como la nutrición, así como características fisiológicos especificas se pueden modificar su contenido y función además se presenta una variación individual que influyen en la prevalecía de caries dental y otras enfermedades dentales. Establecimiento de un rango de valores normales presenta el pase inicial para determinar dichas variaciones individuales. A pesar de esto poco se conoce de las características fisiológicas y biológicas que determinan la composición de la saliva en diferentes poblaciones.

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  107. NATALIS CARLOS
    #2011-0262
    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #26)

    DIA 2: OBSERVACION DE LOS CULTIVOS

    A) OBSERVACION DEL RESULTADO DE LOS CULTIVOS

    Medios solidos: especificar en que condiciones atmosfericas han sido capaces de crecer el microorganismo conmparando la placa ncubada en anaerobiosis y la incubada en anaerobiosis. Describir los tipos de colonias, color, brillo, hemolisis, bordes, diametro, olor....

    Tioglicolato: especificar formas de cricimieno y tipos de respiracion.

    Medio de Snyder: anotar los cambios de color

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  108. DIAPOSITIVA #1

    CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.


    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un
    examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la
    actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta
    enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera
    hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población
    en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no
    la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a
    las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada
    individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con
    modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.

    Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test
    que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque
    no por ello hayan dejado de ser útiles.

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  109. FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROORGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

    A) Fisicoquímicos;
    B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
    C) Nutricionales;
    D) Protectores del Hospedador y
    E) Antagónicos Bacterianos.

    Mientras que en los Factores Fisicoquímicos encontramos PH: El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano.

    Aún así es la saliva en la que ejerce la función amortiguadora más importante para neutralizar la producción de ácidos por los microorganismos. Los reguladores salivales contienen, entre otros, y carbonatos, fosfatos, y proteínas ricas en y histidina que es un aminoácido con capacidad tampón.

    La adhesión consiste en el fenómeno de unión que se establece entre los microorganismos y los tejidos del hospedador, lo que permite la colonización de estos últimos.

    La agregación y la coagregación son los procedimientos, que poseen los microbios, de las mismas con diferentes especies relativamente para adherirse entre sí dando origen a la formación de microcolonias o acumulaciones que fortalecerán y estabilizarán la colonización determinada por la adhesión en sentido estricto. Es más, bacterias sin capacidad para adherirse a ciertos tejidos podrán hacerlo a los mismos mediante su coagregación como otras que sí la tienen.

    Cualquiera de estos tres procesos son claros determinantes de ecológicos que contribuyen a un cierto grado de especificidad y diversidad bacteriana en algunos ecosistemas primarios orales, a la formación de placas y al desarrollo de enfermedades. El fenómeno coagregativo es muy frecuente en la cavidad oral y tiene gran significación ecológica y patológica, ya que es, en buena medida, el responsable de la formación de placas dentales y de las típicas imágenes en mazorcas de maíz, pilosas y mixtas en las mismas.

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  110. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    CRT® BACTERIA PARA LB y SM (Vivadent, Schaan, Liechtenstein)

    Este sistema consta de una lengüeta de plástico recubierta por ambos lados
    por medios selectivos y conectada a un tapón de rosca el cual cierra un tubo transparente, quedando el dispositivo seguro para su almacenamiento e
    incubación, conservándose estéril y húmedo. Una de las superficies de la lengüeta
    está cubierta por agar Rogosa, para recuentos de LB (color verde) y en la otra cara
    con agar Mitis Salivarius Bacitracina para recuentos de SM (color azul oscuro). El
    kit también incorpora cápsulas de parafina, tabletas de NaHCO3 y etiquetas de
    identificación. La dinámica de utilización es la siguiente:

    1. Se recoge saliva estimulada como ya se ha visto anteriormente.
    2. Desenroscar el tapón, y extraer el porta agar del interior del tubo.
    3. Se coloca una tableta de NaHCO3 en la base del tubo.
    4. Retirar con cuidado las láminas protectoras de ambas superficies de agar,
    teniendo cuidado de no tocar el mismo.
    5. Se vuelca la saliva con cuidado sobre las dos superficies del agar con ayuda
    de una pipeta, sin arañar las mismas y de forma que queden humedecidas.
    En esta operación se mantiene la lengüeta en posición vertical y se deja
    gotear la saliva sobrante.
    6. Eliminar las últimas gotas de saliva dejando escurrir un ángulo del borde
    inferior de la lengüeta con el agar sobre papel absorbente limpio y enroscar
    el tapón y cerrarlo bien.
    7. Se identifica el tubo con una etiqueta adhesiva y se incuba a 36±1ºC
    durante 48 horas en posición vertical.

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  111. Tras el desarrollo de los dientes en el niño, nuevas especies del género Streptococcus (ej. S. sanguis, S. mutans) colonizan la superficie dental. Estas especies no colonizan antes la cavidad oral debido a que con anterioridad al desarrollo de la dentición no existían elementos (ej. superficie dura de hidroxiapatita recubierta de la llamada película adquirida) que permitan la adherencia de estas especies, ilustrandonos así del grado de colonización específica desarrollada a lo largo de la evolución, es decir de la convivencia simbiótica entre microorganismo y hospedador.

    La accesibilidad a los distintos ecosistemas presentes en la cavidad oral facilita el estudio de la interacción hospedador-parásito y de su evolución.

    La microbiota oral es compleja:
    Cocos gram positivos: Streptococcus viridans, S. mutans, S. sanguis, S. salivarius, S. oralis y S. mitis.
    En menor medida: Streptococcus pyogenes, Enterococcus, Staphylococcus, Micrococcus y los anaerobios Peptostreptococcus y Peptococcus.
    Cocos gram negativos: especies del género Neisseria y Veillonella. Tanto aerobios como anaerobios.
    Bacilos gram positivos: Actinomyces, Lactobacillus, Bifidobacterium, C. matruchotii, Rothia dentocariosa y otros llamados difteroides o difteromorfos.
    Bacilos gram negativos: Prevotella, Porphyromonas, Fusobacterium, Capnocytophaga, Actinobacillus, Eikenella, Campylobacter y Haemophilus.
    Otros: Espiroquetas comensales, hongos como Candida, Mycoplasma y escasos protozoos como Trichomonas tenax y Entamoeba gingivalis.

    Es importante señalar que la microbiota oral es cambiante en un mismo ecosistema oral, este proceso se conoce como sucesión microbiana, que es la sustitución de unos organismos por otros, existen dos tipos: alogénica y autogénica.
    La alogénica se produce por cambios en el habitat de tipo no microbiano como el nacimiento, la erupción de los primeros dientes, la vida adulta, la caída de los dientes, el uso de prótesis dentales, etc….
    La autogénica consiste en la sustitución de unos microorganismos por otros más adaptados al ambiente cambiado por los primeros colonizadores debido al consumo de nutrientes, acumulación de productos de desecho excretados, cambios de pH, etc. que propician la colonización por nuevas especies más adapatadas a las nuevas condiciones ambientales del ecosistema microbiano.

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  112. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    Microorganismos que se van a procesar en la practica:

    -bacilo grampositivo anaerobio (clostridium.
    -bacilo gramnegativo anaerobio (bacteroides).


    Se sugiere que todas las muestras clínicas provenientes de sitios probables de ser colonizados por anaerobios sean cultivadas en medios para anaerobios .
    Los medios de aislamiento primario requieren de medios de cultivo líquidos y sólidos, el medio tioglicolato suplementado con Vit K, hemina y bicarbonato es ampliamente aceptado porque no requiere de incubación anaeróbica. En cuanto a los medios sólidos un número de diferentes formulaciones cumplen con las especificaciones requeridas como son: Agar Sangre+Suplementos, Agar Schaedler, Agar Brucella, Agar Sangre+ Suplemento+ Inhibidores, etc.. Estos medios son útiles para acelerar el proceso de aislamiento e identificación. Como un mínimo de medios a utilizar se recomienda la inoculación de la muestra en: tioglicolato suplementado, y una placa de Agar sangre + Suplemento , en casos de infecciones polimicrobianas se recomienda utilizar además, una placas de Agar Sangre+ Suplemento+ Inhibidores. Los medios selectivos sólidos deben inocularse abundantemente.
    Una vez inoculados los medios deben ser incubados en una atmósfera de anaerobiosis, ya sea en una jarra con generadores de gas que operan transformando el O2 en H2 y CO2 una vez que se agrega agua al generador en presencia de un catalizador de paladio.
    Alternativamente puede utilizarse una mezcla de gasen en la incubadora que está compuesta por 5-10% de H2, 5-10% CO2, 80-90% N2.
    Normalmente los cultivos deben ser incubados por un mínimo de 48 hrs. Algunos anaerobios requieren mayor tiempo, hasta 3 días para tener colonias visibles.

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  113. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    A) CULTIVO DE ANAEROBIOS

    Objetivos:
    El estudiante debe ser capaaz de:

    1. Clasificar las bacterias en relacion con el oxigenos.
    2.Conocer las tecnicas de aislamiento de las bacterias anaerobias.
    3. Conocer las tecnicas de estudio de la susceptibilidad a la caries.

    Introduccion:

    Las bacterias se clasifican de acuerdo a su tolerancia con el O2 en:

    -Anaerobias estrictas: crecen con <0.5% de presion de O2.
    -Anaerobias facultativas: tolera >3% de presion de O2.
    -Microaerofilas: crecen de 5-10% de presion de O2.
    -Aerobias estrictas: crecen con >10% de presion de O2.

    Las bacterias anaerobias constituyen la flora normal predominante en el ser humano, especialmente en la boca. El cultivo de especies anaerobias es dificil por:

    1) las dificultades tecnicas para garantizar la anaerobiosis durante la manipulacion de la muestra y su posterior cultivo.

    2)La frecuente presencia de mezclas complejas de especies anaerobias y facultaivas.

    3) los requerimientors nutricionales de medios enriquecidos.

    Para considerar un aislado bateriano como una especie anaerobia, es necesario comprobar primero que no es aerotolerante. Para ello se subcultiva en dos medios, incubando no de ellos en condiciones de anaerobiosis y el otro en aerobiosis. Tras 24 horas de incubacion se examinan las placas y e comparan los conocimientos.

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  114. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    SEGUNDO CICLO DE PRACTICAS

    FLORA DE LA BOCA. BACTERIAS ANAEROBIAS

    Diagnostico directo y molecular de las enfermedades infecciosas:

    DIA 1:
    A) tipos de respiracion bacteriana. Medios de cultivos para anaerobios.


    B) prueba de Snyder: determinacion de la susceptibilidad a la caries.

    DIA 2:

    A) observacion de los cltivos.

    B) Diagnostico indirecto de las enfermedades infecciosas. Prueba de microaglutinacion.

    DIA 3:

    A) lectura de la prueba de Snyder.

    B) lectura e interpretacion de la prueba de microaglutinacion.

    C) diagnostico indireto: pruebas confirmatorias.

    D) diagnostico molecular.

    LOS ALUMNOS TIENEN LA OBLIGACION DE ENTREGAR POR ESCRITO, AL FINAL DEL SEGUNDO CICLO DE PRACTICAS, LAS OBSERVACIONES REALIZADAS POR LOS MISMOS A LO LARGO DE LOS DOS CICLOS DE PRACTICAS

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  115. COMPOSICION DE LA SALIVA

    La saliva es un líquido transparente y de viscosidad variable, lo cual se atribuye al ácido siálico. Es inodora como el agua.

    La composición y pH de la saliva varían en función de los estímulos (como el olor o la visión de la comida). El pH salival normal oscila entre 6,5 y 7.[3]

    La composición de la saliva es similar a la del plasma y se caracteriza por los siguientes componentes:

    * Agua: Representa un 99,5 %. Permite que los alimentos se disuelvan y se pueda percibir su sabor a través del sentido del gusto.
    * Iones cloruro: Activan la amilasa salival o ptialina.
    * Bicarbonato y fosfato: Neutralizan el pH de los alimentos ácidos y de la corrosión bacteriana.
    * Moco:: El contenido de mucina, glicoproteina fundamental de la saliva, produce la viscosidad necesaria para funciones lubricantes y de formación del bolo alimenticio que facilita la deglución a lo largo del tubo digestivo, sin dañarlo. [6]
    * Lisozima: Es una sustancia antimicrobiana que destruye las bacterias contenidas en los alimentos, protegiendo en parte los dientes de la caries y de las infecciones.
    * Enzimas: Como la ptialina, que es una amilasa que hidroliza el almidón parcialmente en la boca, comenzando la digestión de los hidratos de carbono. La lipasa lingual inicia también la digestión de grasas.[6]
    * Estaterina: Con un extremo amino terminal muy ácido, que inhibe la precipitación de fosfato cálcico al unirse a los cristales de hidroxiapatita. Además, también tiene función antibacteriana y antifúngica.
    * Otras sustancias: La saliva contiene también inmunoglobulinas específicas, transferrina y lactoferrina. En el 2006 investigadores franceses del Instituto Pasteur identificaron una sustancia en la saliva humana que llamaron Opiorfina, similar a la encontrada en ratas y vacas, que es hasta seis veces más potente que la morfina para calmar el dolor.
    * Calcio: La saliva está saturada de Ca++, con lo que se evita que los dientes lo pierdan y ayuda a digerir el alimento.

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  116. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD TAMPON DE LA SALIVA

    Los sistemas tampón salivares corrigen las variaciones de pH causadas por
    los cambios de concentración de iones ácidos o básicos producidos, por ejemplo,
    por la fermentación de los azúcares.

    En la saliva, dicha amortiguación es llevada a cabo por el sistema ácido carbónico/bicarbonato, sistema fosfato y, en menor, medida por las proteínas
    salivares. De todos ellos, el bicarbonato es el sistema neutralizante más importante
    de la saliva.

    Este sistema tampón se basa en el siguiente equilibrio:
    CO2 + H2
    O <======> H2
    CO3 <======> HCO3
    -
    + H+
    H2
    CO3 ........ Ácido carbónico
    HCO3 ......... Ion bicarbonato
    CO2 ........... Dióxido de carbono

    Aunque existen diversos métodos, la determinación de la capacidad tampón
    se realiza en la actualidad mediante algunos sistemas simplificados que se basan
    en el método de Ericsson que se describe a continuación: A 1ml de saliva
    estimulada se añaden 3 ml. de HCL 0.005 M junto con una gota de octanol (impide
    la formación de espuma). La mezcla se coloca en un sistema de aireación que
    burbujea aire lentamente a través de la saliva. Después de 20 min. se mide el pH.

    Los H+
    del HCL desvían la reacción a la izquierda formándose CO2 que se libera
    casi totalmente debido a la aireación. El pH final es un fiel reflejo de la
    concentración original de HCO3. De esta forma se obtienen valores que están
    relacionados con la capacidad tampón de ambos sistemas (bicarbonato y fosfato),
    ya que éstos actúan juntos.

    El valor de la capacidad tampón es un parámetro que, aunque puede variar,
    es razonablemente estable, teniendo su mayor importancia clínica, en relación con
    el riesgo de caries, cuando los valores son inferiores a 5.5.

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  117. Test de Alban

    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde original del medio virando al amarillo.
    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira del refrigerador (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.
    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las 24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0…..No hay cambio de color
    1…..Cambia 1/4 del tubo
    2…..El viraje abarca 1/2 tubo
    3…..Hasta 3/4 del tubo
    4…..Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza lentamente.
    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa…), esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor. Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede “ver” sus progresos.

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  118. MICROBIOTA ORAL

    Aunque adquirimos los microorganismos ya durante nuestro nacimiento, factores como la edad, el sexo, la alimentación, el embarazo, el ambiente o el sistema inmune del propio individuo los modificarán con el paso del tiempo. La instauración de la microbiota tan sólo lleva unas pocas semanas en el neonato, ya que lactobacilos, corinebacterias, estafilococos, micrococos, bacilos gram negativos entéricos, levaduras y estreptococos desaparecen a los 2 – 5 días después del nacimiento para ser reemplazados por la microbiota humana.
    Atendiendo a la capacidad de colonización de las bacterias podemos dividirlas en dos grupos: residentes y transeúntes, éstas últimas se encuentran en la superficie epitelial, son fáciles de eliminar, y provienen del contacto con diversos elementos ambientales (ej. objetos, tierra, polvo, aliementos, etc.). Estan bacterias no estan adaptadas a las superficies humanas por residir en otros habitats.

    Podemos definir la microbiota normal de un individuo como el conjunto de microorganismos que se colonizan permanentemente a la mayoría de los individuos sanos de la población, y que ejercen sobre éstos un efecto beneficioso al encargarse de:

    * impedir la colonización por otros microorganismos no adaptados a ese habitat (fenómenos de competencia interespecie)
    * activar el sistema inmune. Por ejemplo, estimulando la producción de Ig A secretora.
    * producir nutrientes esenciales. Por ejemplo, algunas especies como E. coli o Bacteroides spp. sintetizan vitamina B y K, además de enzimas capaces de desconjugar sales biliares y hormonas sexuales.

    Aunque la colonización por estos microorganismos suele considerarse beneficiosa también existen ejemplos experimentales que demuestran lo contrario. Por ejemplo, los animales gnobióticos crecidos y mantenidos de por vida en ambientes libres de microorganismos crecen más robustos, sanos y son más longevos que los no mantenidos bajo esas condiciones experimentales. Tampoco debemos olvidar que un gran número de infecciones hospitalarias y extrahospitalarias son causadas por microorganismos pertenecientes a nuestra propia microbiota (estafilococos, estreptococos, etc.) y no por las especies ambientales que constantemente están en contacto con nosotros.

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  119. FACTORES NUTRICIONALES

    La microbiota oral obtiene sus nutrientes de tres fuentes distintas: de los tejidos o secreciones del hospedador (fuentes endógenas), de otros microorganismos (fuentes bacterianas) y de la dieta (fuentes exógenas).

    Fuentes endógenas: el medio nutricional del surco gingival es muy distinto de los de la mucosa oral, el dorso de la lengua o el de las superficies dentales supragingivales. En estas últimas, las sustancias nutritivas provienen de la saliva, y en el primero del líquido crevicular.

    Fuentes exógenas: generalmente, el aporte exógeno más importantes de la microbiota oral está representado por la sacarosa y tiene además una notable significación ecológica. Gracias a ella, las bacterias sintetizan polisacáridos de reserva tanto intra como extracelulares y su fermentación, aparte de la producción de ácidos desmineralizantes, descienda el PH limitando el desarrollo de los microorganismos sensibles.

    FACTORES PROTECTORES DEL HOSPEDADOR

    Son todos aquellos que de alguna forma limitan, por parte del hospedador, la multiplicación, el establecimiento y la penetración de los microorganismos, contribuyendo al estado de salud de la cavidad oral.

    ➢ Integridad de la mucosa y dientes
    ➢ Descamación celular
    ➢ Masticación, deglución y succión
    ➢ Tejidos linfoides
    ➢ Saliva
    ➢ Líquido crevicular


    FACTORES ANTAGÓNICOS BACTERIANOS

    En un ecosistema como la cavidad oral en el que conviven multitud de microorganismos, no es infrecuente que se produzcan interacciones que pueden ser perjudiciales para algunos de ellos. Muchas no han podido ser detectadas por la sencilla razón de que las bacterias afectadas, al ser eliminadas, no han dejado constancia de su residencia. A veces, los efectos no son absolutos, pero es evidente que pueden actuar como determinantes ecológicos especialmente sobre microorganismo sensibles próximos.
    Las consecuencias del descontrol en los factores protectores y antagónicos bacterianos es un sobrecrecimiento que puede llevar a patologías como:

    Infección pulpar: Favorecida por caries, traumatismos, infecciones adyacentes de otras piezas... etc.
    Abscesos periapicales: Infección y formación de absceso en el ápice del diente, generalmente precedido por una infección pulpar.
    Alveolitis: Infección de los septos óseos o de los alveolos, posterior a una extracción dentaria.

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  120. SALIVA

    La saliva (también conocida como baba) es un fluido orgánico complejo producido por las glándulas salivales en la cavidad bucal, y directamente involucrada en la primera fase de la digestión.

    La saliva puede ser vehículo de contagio de enfermedades en humanos, como el herpes labial o la mononucleosis.

    Se estima que la boca está humedecida por la producción de entre 1 y 1.5 litros de saliva al día, durante la vida de una persona se generan unos 34.000 litros. Esta cantidad de saliva es variable ya que va disminuyendo conforme avanzan los años y debido a diferentes tratamientos.[1]

    La producción de saliva está relacionada con el ciclo circadiano, de tal manera que por la noche se segrega una mínima cantidad de saliva.

    La saliva es segregada por las glándulas salivares mayores parótida y submaxilar (80%- 90%)) en condiciones estimuladas, mientras que las glándulas sublinguales producen solo el 5% del total. Las glándulas menores son responsables basicamente de la secreción en reposo y contribuyen al 5% al 10% del total de saliva secretada.[2]

    La disminución patológica de saliva recibe el nombre de hiposalivación o hiposialia, mientras que la sensación de sequedad bucal se denomina xerostomía, y la producción excesiva, sialorrea.

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  121. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD ACIDIFICANTE DE LA SALIVA

    METODO DE SNYDER

    Objetivos:

    El estudiante debe ser capaz de:

    1. Relacionnar la produccion de acido por algunas bacterias de la boca con la susceptibilidad a la caries.

    2. Nombrar los principales microorganismos relacionados con la caries dental.

    3. Conocer la constitucion del medio de Snyder:

    INTRODUCCION:

    En la aparicion de la caries hay que tener en cuenta:

    -S.Mutans se une al esmalte, metaboliza disacaidos y acidifica el Ph.
    -Conforme mas se acidifica, mas deificil le resulta crecer, pero:

    -Lactobacillus comienza a crecer y a acidificar mas el medio; Destruccion del esmalte= caries.

    El medio de Snyder mide la produccion de acidos a partir del metabolismo de la glucosa por los microorganismos de la saliva.

    Esta compuesto por: Glucosa, purpura de bromocresol, triptosa, CLNy, y agar y su Ph es de 4.8. Cuando desciende a 4.6 o menos el indicador vira a amarillo.

    Mareriales y medios que se usan en la practica:

    Medio de Snyder en tubo.
    Placa de petri esteril.
    Pipeta de bulbo esteril.
    Siembra del medio de Snyder.
    Calentar el medio de Snyder hasta que se licue.
    Recoger la saliva en una placa de petri.
    Con la pipeta, homgeneizar la saliva.
    Pipetear 0.2 ml. de saliva en el medio de 45 grados celsius.
    Mover el ubo entre las palmas de las manos para mezclar la saliva con el medio.
    Solidificar en posicion vertical.
    Observar a las 24 y 48 horas.

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  122. Determinacion del Flujo Salivar

    La saliva proviene de tres glándulas principales: las glándulas parótidas, submaxilares y sublinguales. Desde el punto de vista histológico, éstas suelen clasificarse en glándulas puramente serosas, mixtas serosas, mucosas y puramente mucosas, respectivamente. También se toman en cuenta glándulas mucosas menores que se hallan presentes en muchas regiones de la boca y que han sido clasificadas como glándulas sublingual menor, lingual, labial, bucal, palatina y glosopalatina; estas glándulas menores proporcionan de un 7 a 8% del volumen total de saliva en condiciones tanto de reposo como de estimulación.

    El flujo salival (volumen de saliva, producido en las glándulas salivales en la unidad de tiempo) se describe como uno de los factores que cuando presenta una disminución significativa favorece la aparición de caries dental; este hecho se ha observado en pacientes con xerostomía, debido a la ingestión de drogas, radioterapia u otras enfermedades que afectan la normofunción de las glándulas salivales. En la actualidad, numerosos trabajos refieren una asociación significativa entre la prevalencia de caries dental y la baja tasa de flujo salival.

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  123. 2011-0579

    MICROBIOTA ORAL

    Aunque adquirimos los microorganismos ya durante nuestro nacimiento, factores como la edad, el sexo, la alimentación, el embarazo, el ambiente o el sistema inmune del propio individuo los modificarán con el paso del tiempo. La instauración de la microbiota tan sólo lleva unas pocas semanas en el neonato, ya que lactobacilos, corinebacterias, estafilococos, micrococos, bacilos gram negativos entéricos, levaduras y estreptococos desaparecen a los 2 – 5 días después del nacimiento para ser reemplazados por la microbiota humana.
    Atendiendo a la capacidad de colonización de las bacterias podemos dividirlas en dos grupos: residentes y transeúntes, éstas últimas se encuentran en la superficie epitelial, son fáciles de eliminar, y provienen del contacto con diversos elementos ambientales (ej. objetos, tierra, polvo, aliementos, etc.). Estan bacterias no estan adaptadas a las superficies humanas por residir en otros habitats.

    Podemos definir la microbiota normal de un individuo como el conjunto de microorganismos que se colonizan permanentemente a la mayoría de los individuos sanos de la población, y que ejercen sobre éstos un efecto beneficioso al encargarse de:

    * impedir la colonización por otros microorganismos no adaptados a ese habitat (fenómenos de competencia interespecie)
    * activar el sistema inmune. Por ejemplo, estimulando la producción de Ig A secretora.
    * producir nutrientes esenciales. Por ejemplo, algunas especies como E. coli o Bacteroides spp. sintetizan vitamina B y K, además de enzimas capaces de desconjugar sales biliares y hormonas sexuales.

    Aunque la colonización por estos microorganismos suele considerarse beneficiosa también existen ejemplos experimentales que demuestran lo contrario. Por ejemplo, los animales gnobióticos crecidos y mantenidos de por vida en ambientes libres de microorganismos crecen más robustos, sanos y son más longevos que los no mantenidos bajo esas condiciones experimentales. Tampoco debemos olvidar que un gran número de infecciones hospitalarias y extrahospitalarias son causadas por microorganismos pertenecientes a nuestra propia microbiota (estafilococos, estreptococos, etc.) y no por las especies ambientales que constantemente están en contacto con nosotros.

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  124. 2011-0579

    FACTORES DE LA CAVIDAD ORAL QUE INFLUYEN EN EL CRECIMIENTO DE LOS MICROORGANISMOS

    Los factores que regula la composición, el desarrollo, la cantidad, la coexistencia y la distribución de la microbiota oral en los diversos ecosistemas primarios se conocen como determinantes ecológicos. Son de cinco tipos:

    A) Fisicoquímicos;
    B) De Adhesión, Agregación, y Coagregación;
    C) Nutricionales;
    D) Protectores del Hospedador y
    E) Antagónicos Bacterianos.

    Mientras que en los Factores Fisicoquímicos encontramos PH: El PH de la saliva oscila entre 6.5 y 7.5, un valor óptimo para el desarrollo de la mayor parte de los microorganismos relacionados con el ser humano. Sin embargo, este pH, especialmente en determinadas zonas, está sometido a continuas fluctuaciones. Así, el consumo de azúcares en la placa va seguido de un descenso brusco del PH debido a la producción de ácidos provenientes el metabolismo bacteriano.

    Aún así es la saliva en la que ejerce la función amortiguadora más importante para neutralizar la producción de ácidos por los microorganismos. Los reguladores salivales contienen, entre otros, y carbonatos, fosfatos, y proteínas ricas en y histidina que es un aminoácido con capacidad tampón.

    La adhesión consiste en el fenómeno de unión que se establece entre los microorganismos y los tejidos del hospedador, lo que permite la colonización de estos últimos.

    La agregación y la coagregación son los procedimientos, que poseen los microbios, de las mismas con diferentes especies relativamente para adherirse entre sí dando origen a la formación de microcolonias o acumulaciones que fortalecerán y estabilizarán la colonización determinada por la adhesión en sentido estricto. Es más, bacterias sin capacidad para adherirse a ciertos tejidos podrán hacerlo a los mismos mediante su coagregación como otras que sí la tienen.

    Cualquiera de estos tres procesos son claros determinantes de ecológicos que contribuyen a un cierto grado de especificidad y diversidad bacteriana en algunos ecosistemas primarios orales, a la formación de placas y al desarrollo de enfermedades. El fenómeno coagregativo es muy frecuente en la cavidad oral y tiene gran significación ecológica y patológica, ya que es, en buena medida, el responsable de la formación de placas dentales y de las típicas imágenes en mazorcas de maíz, pilosas y mixtas en las mismas.

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  125. 2011-0576

    Test de Alban

    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde original del medio virando al amarillo.
    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira del refrigerador (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.
    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las 24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0…..No hay cambio de color
    1…..Cambia 1/4 del tubo
    2…..El viraje abarca 1/2 tubo
    3…..Hasta 3/4 del tubo
    4…..Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza lentamente.
    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa…), esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor. Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede “ver” sus progresos.

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  126. 2011-0576

    Tras el desarrollo de los dientes en el niño, nuevas especies del género Streptococcus (ej. S. sanguis, S. mutans) colonizan la superficie dental. Estas especies no colonizan antes la cavidad oral debido a que con anterioridad al desarrollo de la dentición no existían elementos (ej. superficie dura de hidroxiapatita recubierta de la llamada película adquirida) que permitan la adherencia de estas especies, ilustrandonos así del grado de colonización específica desarrollada a lo largo de la evolución, es decir de la convivencia simbiótica entre microorganismo y hospedador.

    La accesibilidad a los distintos ecosistemas presentes en la cavidad oral facilita el estudio de la interacción hospedador-parásito y de su evolución.

    La microbiota oral es compleja:
    Cocos gram positivos: Streptococcus viridans, S. mutans, S. sanguis, S. salivarius, S. oralis y S. mitis.
    En menor medida: Streptococcus pyogenes, Enterococcus, Staphylococcus, Micrococcus y los anaerobios Peptostreptococcus y Peptococcus.
    Cocos gram negativos: especies del género Neisseria y Veillonella. Tanto aerobios como anaerobios.
    Bacilos gram positivos: Actinomyces, Lactobacillus, Bifidobacterium, C. matruchotii, Rothia dentocariosa y otros llamados difteroides o difteromorfos.
    Bacilos gram negativos: Prevotella, Porphyromonas, Fusobacterium, Capnocytophaga, Actinobacillus, Eikenella, Campylobacter y Haemophilus.
    Otros: Espiroquetas comensales, hongos como Candida, Mycoplasma y escasos protozoos como Trichomonas tenax y Entamoeba gingivalis.

    Es importante señalar que la microbiota oral es cambiante en un mismo ecosistema oral, este proceso se conoce como sucesión microbiana, que es la sustitución de unos organismos por otros, existen dos tipos: alogénica y autogénica.
    La alogénica se produce por cambios en el habitat de tipo no microbiano como el nacimiento, la erupción de los primeros dientes, la vida adulta, la caída de los dientes, el uso de prótesis dentales, etc….
    La autogénica consiste en la sustitución de unos microorganismos por otros más adaptados al ambiente cambiado por los primeros colonizadores debido al consumo de nutrientes, acumulación de productos de desecho excretados, cambios de pH, etc. que propician la colonización por nuevas especies más adapatadas a las nuevas condiciones ambientales del ecosistema microbiano.

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  127. 2011-0576

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD TAMPON DE LA SALIVA

    Los sistemas tampón salivares corrigen las variaciones de pH causadas por
    los cambios de concentración de iones ácidos o básicos producidos, por ejemplo,
    por la fermentación de los azúcares.

    En la saliva, dicha amortiguación es llevada a cabo por el sistema ácido carbónico/bicarbonato, sistema fosfato y, en menor, medida por las proteínas
    salivares. De todos ellos, el bicarbonato es el sistema neutralizante más importante
    de la saliva.

    Este sistema tampón se basa en el siguiente equilibrio:
    CO2 + H2
    O <======> H2
    CO3 <======> HCO3
    -
    + H+
    H2
    CO3 ........ Ácido carbónico
    HCO3 ......... Ion bicarbonato
    CO2 ........... Dióxido de carbono

    Aunque existen diversos métodos, la determinación de la capacidad tampón
    se realiza en la actualidad mediante algunos sistemas simplificados que se basan
    en el método de Ericsson que se describe a continuación: A 1ml de saliva
    estimulada se añaden 3 ml. de HCL 0.005 M junto con una gota de octanol (impide
    la formación de espuma). La mezcla se coloca en un sistema de aireación que
    burbujea aire lentamente a través de la saliva. Después de 20 min. se mide el pH.

    Los H+
    del HCL desvían la reacción a la izquierda formándose CO2 que se libera
    casi totalmente debido a la aireación. El pH final es un fiel reflejo de la
    concentración original de HCO3. De esta forma se obtienen valores que están
    relacionados con la capacidad tampón de ambos sistemas (bicarbonato y fosfato),
    ya que éstos actúan juntos.

    El valor de la capacidad tampón es un parámetro que, aunque puede variar,
    es razonablemente estable, teniendo su mayor importancia clínica, en relación con
    el riesgo de caries, cuando los valores son inferiores a 5.5.

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  128. Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Determinación del flujo salival con saliva no estimulada”
    El flujo y el pH salival, cuando presentan bajas puntuaciones se relacionan con un alto riesgo e indicarían la necesidad de implementar medidas preventivas, las cuales en ningún caso modificarán las puntuaciones resultantes, sino contrarrestar sus efectos negativos. Esta medición se realizará 2 veces en el paciente Integral (en la etapa de diagnóstico y para el alta básica) y 1 vez para el paciente de Mantención (en su diagnóstico).
    La determinación de saliva no estimulada tiene mucha importancia ya que está relacionada con el tiempo de aclaramiento de azúcar y ácidos de la boca.
    Para el procedimiento de recolección de flujo salival no estimulado o en reposo, el paciente no debe haber ingerido alimentos por lo menos 1 hora antes de la recolección. Se realiza con el paciente sentado en posición relajada, con los codos apoyados en las rodillas. Se debe instruir a su paciente a no tragar y evitar cualquier movimiento de las mejillas o de la mandíbula; la lengua se apoya en las superficies linguales de los incisivos superiores. En esta posición, el paciente dobla la cabeza hacia delante y va dejando gotear la saliva pasivamente sin tratar de escupir ni masticar, por 5 minutos cronometrados en un vaso plástico limpio.
    El pH salival se medirá con cintas colorimétricas marca Merk para medir pH. El rango va de 1 a 14 donde 1 es muy ácido, 7 es neutro y 14 muy alcalino, y presenta 4 recuadros para observar la variación de color.
    Esta cinta se colocará en la boca del paciente en la zona del primer molar inferior izquierdo. Debe mantenerse en boca entre 30 a 60 segundos. En contacto con la saliva el marcador virará el color de los 4 recuadros que presenta, esto debe ser comparado con la caja kit y se asignará el valor de acuerdo al que presente la misma coloración en los 4 recuadros. Se considerará pH crítico valores de 5 o menos. Este valor debe registrarse bajo el cuadro de evaluación del riesgo cariogénico.
    Para la evaluación del riesgo de caries se considerará en el recuadro saliva, riesgo presente cuando esté alterado 1 o los 2 parámetros (Flujo y pH salival).

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  129. Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Determinación del flujo salival con saliva estimulada”
    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados. Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque no por ello hayan dejado de ser útiles.
    El test de Alban y los recuentos microbianos son pruebas que sirven para controlar el estado del medio oral del paciente, por lo que deben ser repetidos periódicamente hasta conseguir bajas puntuaciones.
    El flujo salivar y la capacidad tampón, por el contrario, cuando presentan bajas puntuaciones indican alto riesgo y necesidad de implantar medidas preventivas, las cuales en ningún caso tienen como fin modificar las puntuaciones de estos test, sino contrarrestar los efectos negativos de estas puntuaciones.
    Hay una serie de medicamentos (antihistamínicos, anticolinérgicos, antiparkinsonianos, antidepresivos...) y estados patológicos (radioterapia de cabeza y cuello, diabetes mellitus, sarcoidosis, ansiedad, estrés. drogadicción...) que conllevan una disminución del flujo salivar, que es importante conocer, ya que estos pacientes que presentan hiposalivación y xerostomía son de alto riesgo de caries.

    Este test está especialmente indicado en aquellos pacientes que tienen síntomas de xerostomía: el paciente manifiesta sequedad de boca, tiene los labios resecos y, a la exploración, no acumula saliva en el suelo de la boca. En condiciones normales no puede considerarse como test de actividad de caries.
    Esta tasa es más práctica y, por lo tanto, es a menudo realizada en la clínica. El paciente debe masticar una cápsula de parafina estéril de aproximadamente 1 gr. (se empleará parafina con un punto de fusión de 42-44°C), e ir recogiendo toda la saliva que segregue en un tubo graduado durante 5 minutos. Es preferible desechar la saliva producida en los 2 primeros minutos y empezar a contar a partir de ese momento; de esta forma se arrastran restos residuales que queden en boca. Se puede reducir la formación de espuma introduciendo el tubo graduado en un recipiente con hielo o añadiendo una gota de octanol.
    El resultado se expresa en ml/min y, al igual que ocurre con la saliva no estimulada, la tasa es muy variable entre diferentes personas.
    TASA DE SECRECIÓN NORMAL.......................................: >1ml/min.
    TASA DE SECRECIÓN BAJA.......................................... : <0.7ml/min.

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  130. Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Capacidad tampón de la saliva”
    La saliva posee una capacidad amortiguadora y neutralizadora de los ácidos producidos por los organismos cariogenicos o ingeridos atraves de la dieta, permitiéndole mantener un pH relativamente constante. Es también una fuente de calcio y fosfato, necesarios para la remineralización del esmalte.
    De ahí que los sistemas o tampones ejercen el rol de mantenimiento de la homeostasis de pH en los líquidos biológicos y de absorber los cambios en la concentración de iones hidrogenos que se le imponen al sistema, por ejemplo en la sangre y saliva.
    Debido a su composición los sistemas formados por un acidos débil y una sal del mismo acido o por una base débil y la sal de esta base débil, pueden hacer frente a los cambios de acidez y basicidad que se le imponen al medio.

    Capacidad Amortiguadora o Buffer: la función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH.
    Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente. Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el pH, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales.

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  131. Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Capacidad acidificante de la saliva. Método de Snyder y test de Alban”
    Test de Alban
    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde original del medio virando al amarillo.
    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira del refrigerador (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.
    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las 24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0…..No hay cambio de color
    1…..Cambia 1/4 del tubo
    2…..El viraje abarca 1/2 tubo
    3…..Hasta 3/4 del tubo
    4…..Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza lentamente.
    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa…), esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor. Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede “ver” sus progresos.
    Test de Snyder
    Esta prueba está basada en el tiempo e intensidad con que cambia el pH del medio de cultivo inoculado con una muestra de saliva. La acción de microorganismos acidogénicos anaerobios sobre la glucosa presente en el medio de cultivo permite que al acidificarse el medio cambie el indicador de pH, verde de bromocresol, desde el color azul verdoso característico hasta una tonalidad amarillo-limón, la velocidad a la que se efectué este cambio indicara la actividad cariogénica de la muestra, a menor tiempo de cambio mayor actividad.

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  132. Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Cuantificación de lactobacillus acidophilus”
    Los lactobacilos se encuentran entre los organismos predominantes de las floras intestinal y vaginal.
    Cuando la composición de la flora normal se ve afectada por factores internos o externos (por ejemplo, tratamientos antimicrobianos o antineoplásticos), pueden ser superados en crecimiento por las Enterobacteriaceae, pseudomonas o levaduras. Dicha situación de crecimiento excesivo en el intestino puede ser responsable de la diarrea crónica y otros trastornos intestinales y digestivos. Asimismo, se ha descubierto que una reducción de la flora de Lactobacillus se encuentra asociada con vaginitis o vaginosis en las mujeres premenopáusicas. Dada su baja patogenecidad, cada vez se utilizan más los lactobacilos y las bifidobacterias como probióticos para mejorar la composición de la flora normal en los casos de trastornos tales como la diarrea crónica aguda y la vaginitis Rogosa et al desarrollaron el agar LBS como medio selectivo para el aislamiento y cuantificación de lactobacilos orales y fecales. Descubrieron que el agar LBS es más selectivo para evitar el crecimiento excesivo de mohos, estreptococos y proliferación de organismos que el agar jugo de tomate anterior. BD LBS Agar se utiliza para el aislamiento y recuento de lactobacilos a partir de alimentos, productos lácteos y las floras intestinal, vaginal y dental humanas.
    En BD LBS Agar, la peptona de caseína, el extracto de levadura y la sal de amonio proporcionan nitrógeno. El polisorbato 80 suministra ácidos grasos necesarios para el crecimiento de lactobacilos. El manganeso y el magnesio son factores de crecimiento. La glucosa es una fuente universal de energía y carbono. El citrato de amonio, el acetato de sodio, el ácido acético y el sulfato ferroso actúan como inhibidores de los estreptococos y otros organismos contaminantes y suministran el bajo pH que es tolerado por los lactobacilos, pero no por muchos otros organismos. El fosfato, junto con acetato y ácido acético, estabiliza el pH.

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  133. Perla Tolentino Mercedes 81511
    PROCEDIMIENTO
    Materiales suministrados
    BD LBS Agar (placas Stacker de 90 mm). Controladas microbiológicamente.
    Materiales no suministrados
    Medios de cultivo auxiliar, reactivos y el equipo de laboratorio que se requiera.
    Tipos de muestras
    Este medio se utiliza en estudios de la flora de Lactobacillus en pacientes que sufren de diarrea crónica y otros trastornos intestinales y digestivos (utilizar muestras fecales [idealmente de 10 a 15 gramos de muestra fecal] de no más de 24 h) y para el análisis de la presencia de lactobacilos en las floras vaginal y dental (utilizar torundas vaginales y dentales) (véase también CARACTERISTICAS DE RENDIMIENTO Y LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO). Este medio también se utiliza para determinar los lactobacilos presentes en los alimentos. Se recomienda utilizar un medio de transporte anaerobio para todos los tipos de muestras.
    Procedimiento de análisis
    Para el estudio de la flora intestinal, las muestras fecales humanas recientes deben suspenderse en solución salina estéril o anaerobia (solución salina con 0,1 g de cisteína-HCI por litro), seguido de diluciones de 1:10 en el mismo medio en suspensión. Las muestras de 20 a 50 µL de las diluciones más altas (por ejemplo, las de 10-4 a 10-7) deben transferirse mediante pipeta a BD LBS Agar, que luego se inocula mediante extensión de la muestra y se incuba en atmósfera anaerobia, por ejemplo, utilizando el sistema anaerobio BD GasPak.
    Se utiliza el mismo procedimiento para las muestras de alimentos.
    Si el material se cultiva directamente empleando una torunda, hacerla girar en una sección pequeña cercana al borde, extendiendo luego a partir de esta área inoculada.
    Otros medios (por ejemplo, para la determinación de recuentos totales de anaerobios y posiblemente para la detección de otros grupos bacterianos, como Bacteroides, Clostridium, Enterobacteriaceae) también deben inocularse e incubarse según los requisitos de los medios y los grupos bacterianos.
    Los factores óptimos de tiempo y temperatura de incubación son de 2 a 3 días a 35 – 37 °C.
    Se debe evitar una incubación prolongada del medio si se requieren subcultivos de los aislados, porque la viabilidad de las colonias puede reducirse posteriormente.

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  134. Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Cuantificación de streptococcus mutans”
    Streptococcus mutans es una bacteria Gram positiva, anaerobia facultativa que se encuentra normalmente en la cavidad bucal humana, formando parte de la placa bacteriana o biofilm dental. Se asocia al inicio y desarrollo de la caries dental. Es acidófilo porque vive en medio con pH bajo, acidogénico por metabolizar los azúcares a ácidos y acidúrico por sintetizar ácidos a pesar de encontrarse en un medio de tales condiciones. Metaboliza la sacarosa para producir polisacáridos extracelulares (sustancia laxa que facilita su adhesión a las caras libres de las piezas dentarias) e intracelulares (metabolismo energético). En estado de salud, un recuento de estas bacterias en boca será de menos de 100.000 UFC.

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  135. * EL FLUJO SALIVAL
    La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada. La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos.

    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.
    La saliva estimulada es aquella que se obtiene al excitar o inducir, con mecanismos externos, la secreción de las glándulas salivales. Estos estímulos pueden ser la masticación o a través del gusto. En este caso, la glándula parótida es la que toma el mando y hace un aporte mayor de fluido salival el cual es de un 50%.

    Por lo tanto, la composición de la saliva mixta estimulada es muy parecida a la secreción hecha por la glándula parótida cuando se estimula o excita debido a su aporte a la saliva total. Entonces, cuando se habla de flujo salival podemos definirlo como aquel fluido compuesto, no sólo por las secreciones de las glándulas salivales mayores y menores sino, además por el exudado gingival, microorganismos y sus productos, células epiteliales, restos alimenticios y exudado nasal y es sin lugar a dudas el factor más importante para controlar el desarrollo de la caries dental.

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección. El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min. Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.
    La tasa de flujo salival es uno de los puntos más importantes para determinar el riesgo a la caries y la cual puede ser modificada por diferentes factores. Una tasa de flujo salival adecuada es esencial para que la salud bucal se mantenga pero este equilibrio puede interrumpirse al alterarse el balance entre el huésped y los microorganismos, dando lugar al crecimiento excesivo de las bacterias. Como se hizo notar anteriormente, hay factores que influyen en el flujo salival. Antes que nada está el sistema nervioso y ciertos factores tanto biológicos como ambientales que afectan el flujo salival. En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación.

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  136. Capacidad Amortiguadora o Buffer de la Saliva:
    La función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de pH. 12 Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente.9 Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el pH, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales.

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    1. Joskaty alvarez 88976 grupo de los miércoles de 4-6.


      “Determinación del flujo salival con saliva no estimulada”
      El flujo y el pH salival, cuando presentan bajas puntuaciones se relacionan con un alto riesgo e indicarían la necesidad de implementar medidas preventivas, las cuales en ningún caso modificarán las puntuaciones resultantes, sino contrarrestar sus efectos negativos. Esta medición se realizará 2 veces en el paciente Integral (en la etapa de diagnóstico y para el alta básica) y 1 vez para el paciente de Mantención (en su diagnóstico).
      La determinación de saliva no estimulada tiene mucha importancia ya que está relacionada con el tiempo de aclaramiento de azúcar y ácidos de la boca.
      Para el procedimiento de recolección de flujo salival no estimulado o en reposo, el paciente no debe haber ingerido alimentos por lo menos 1 hora antes de la recolección. Se realiza con el paciente sentado en posición relajada, con los codos apoyados en las rodillas. Se debe instruir a su paciente a no tragar y evitar cualquier movimiento de las mejillas o de la mandíbula; la lengua se apoya en las superficies linguales de los incisivos superiores. En esta posición, el paciente dobla la cabeza hacia delante y va dejando gotear la saliva pasivamente sin tratar de escupir ni masticar, por 5 minutos cronometrados en un vaso plástico limpio.

      La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección. El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min. Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.
      La tasa de flujo salival es uno de los puntos más importantes para determinar el riesgo a la caries y la cual puede ser modificada por diferentes factores. Una tasa de flujo salival adecuada es esencial para que la salud bucal se mantenga pero este equilibrio puede interrumpirse al alterarse el balance entre el huésped y los microorganismos, dando lugar al crecimiento excesivo de las bacterias. Como se hizo notar anteriormente, hay factores que influyen en el flujo salival. Antes que nada está el sistema nervioso y ciertos factores tanto biológicos como ambientales que afectan el flujo salival. En personas sanas, la tasa de flujo salival basal o no estimulada se puede ver afectada por: la edad, el ritmo circadiano, el ritmo circanual, la posición corporal, la luminosidad ambiental, la tensión, el fumar, la estimulación gustativa previa, la estimulación olfativa, la estimulación psíquica y grado de hidratación.

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  137. joskaty alvarez 88976

    Capacidad acidificante de la saliva. Método de Snyder y test de Alban”
    Test de Alban
    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de pH 4.7, contiene, entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.

    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira del refrigerador (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.
    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las 24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0…..No hay cambio de color
    1…..Cambia 1/4 del tubo
    2…..El viraje abarca 1/2 tubo
    3…..Hasta 3/4 del tubo
    4…..Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza lentamente.
    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa…), esto no siempre es así; por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor. Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede “ver” sus progresos.
    Test de Snyder


    Perla Tolentino Mercedes 81511
    “Capacidad tampón de la saliva”
    La saliva posee una capacidad amortiguadora y neutralizadora de los ácidos producidos por los organismos cariogenicos o ingeridos atraves de la dieta, permitiéndole mantener un pH relativamente constante. Es también una fuente de calcio y fosfato, necesarios para la remineralización del esmalte.
    De ahí que los sistemas o tampones ejercen el rol de mantenimiento de la homeostasis de pH en los líquidos biológicos y de absorber los cambios en la concentración de iones hidrogenos que se le imponen al sistema, por ejemplo en la sangre y saliva.
    Debido a su composición los sistemas formados por un acidos débil y una sal del mismo acido o por una base débil y la sal de esta base débil, pueden hacer frente a los cambios de acidez y basicidad que se le imponen al medio.

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  138. La saliva puede clasificarse, de acuerdo a la forma de obtenerla, en estimulada y en reposo, basal o no estimulada. La saliva basal o no estimulada es aquella que se obtiene cuando el individuo está despierto y en reposo, siendo mínima la estimulación glandular o en ausencia de estímulos exógenos.
    Para el procedimiento de recolección de flujo salival no estimulado o en reposo, el paciente no debe haber ingerido alimentos por lo menos 1 hora antes de la recolección. Se realiza con el paciente sentado en posición relajada, con los codos apoyados en las rodillas. Se debe instruir a su paciente a no tragar y evitar cualquier movimiento de las mejillas o de la mandíbula; la lengua se apoya en las superficies linguales de los incisivos superiores. En esta posición, el paciente dobla la cabeza hacia delante y va dejando gotear la saliva pasivamente sin tratar de escupir ni masticar, por 5 minutos cronometrados en un vaso plástico limpio.

    La tasa de flujo salival se puede obtener en condiciones de estimulación o no y se calcula dividiendo el volumen salival entre el tiempo de recolección. El promedio de la tasa de flujo salival en reposo de la saliva completa o mixta es de 0.4 ml/min; mientras que para la saliva mixta estimulada con parafina es de 2 ml/min. Aproximadamente 0,5 litros de saliva son secretados por día, del cual el 25% proviene de las glándulas submaxilares y un 66% proviene de las glándulas parótidas.

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  139. santa miguelina nolasco 87490

    La saliva ayuda en el proceso de la digestión. Antes de que los alimentos lleguen a tu estómago, la saliva empieza a descomponerlos mientras aún están en tu boca. Esto lo hace con la ayuda de las enzimas, unas sustancias químicas que se encuentran en la saliva. Descomponer de esta forma los alimentos le facilita un poquito el trabajo a la lengua -así puede empujar más fácilmente hacia la garganta los alimentos masticados.
    En los humanos y mamíferos, así como en reptiles la saliva es muy importante para:
    Mantener el pH neutro, es decir a 6,5. Esta capacidad tamponadora del medio al neutralizar el medio ácido producido tras las comidas evita la desmineralización del esmalte dental y la acumulación de sarro que se produce con un pH básico.
    Cicatrización: Además de favorecer la mineralización del esmalte de los dientes por su capacidad tamponadora, la saliva contiene también un factor de crecimiento epidérmico que facilita la cicatrización de la mucosa bucal lesionada.8
    Función digestiva: Por el efecto de las enzimas que contiene, al mezclarse con el alimento junto con la masticación lo transforma en bolo alimenticio, iniciando la digestión de carbohidratos y grasas y facilitando la deglución. 6
    Función gustativa: la saliva permite que las partículas sápidas (responsables del sabor) de los alimentos alcancen y estimulen químicamente los corpúsculos gustativos en la cavidad oral especialmente en la lengua. Por eso la sensibilidad gustativa es menos cuando disminuye la secresion salival por la edad avanzada, efectos de ciertos medicamentos o por trastornos patológicos.2
    Lubricar la cavidad oral, además de facilitar la primera fase de la digestión y la deglución en la especie humana es importante en la expresión oral al facilitar la articulación de las palabras.6
    Mantener el equilibrio hídrico, al disminuir su producción por deshidratación envía un mensaje de alarma al organismo produciendo la sensación de sed.6
    Protección: La saliva por su composición enzimática, especialmente por la lizosima, las inmunoglobulinas y las proteinas como la muramidasa y la lactoferrina, defiende a la cavidad oral de la infección bacteriana. 6 Así mismo. en especies como las serpientes venenosas y de cierto tipo de musaraña, como el almiquí o solenodon, el veneno que las protege de depredadores y enemigos es saliva modificada.9
    La saliva del dragón de Komodo tiene hasta 82 tipos diferentes de bacterias que provocan una septicemia en su presa, que muere a las pocas horas lo cual permite al animal cazarla sin esfuerzo.


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  140. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #1)

    Concretamente, entendemos por criterio o factor de riesgo toda característica y circunstancia determinada ligada a una persona, a un grupo de personas o a una población, la cual sabemos que está asociada con un riesgo de enfermedad, la posibilidad de evolución de un proceso mórbido o de la exposición especial a tal proceso.


    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.

    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un
    examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la
    actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta
    enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera
    hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población
    en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no
    la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a
    las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada
    individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con
    modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.

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  141. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #2)

    SALIVA

    La saliva (también conocida como baba) es un fluido orgánico complejo producido por las glándulas salivales en la cavidad bucal, y directamente involucrada en la primera fase de la digestión.
    La saliva puede ser vehículo de contagio de enfermedades en humanos, como el herpes labial o la mononucleosis.

    La saliva es un líquido transparente y de viscosidad variable, lo cual se atribuye al ácido siálico. Es inodora como el agua.
    La composición y pH de la saliva varían en función de los estímulos (como el olor o la visión de la comida). El pH salival normal oscila entre 6,5 y 7.3

    La composición de la saliva es similar a la del plasma y se caracteriza por los siguientes componentes:
    • Agua: Representa un 99,5 %.4 5 Permite que los alimentos se disuelvan y se pueda percibir su sabor a través del sentido del gusto.
    • Iones cloruro: Activan la amilasa salival o ptialina.
    • Bicarbonato y fosfato: Neutralizan el pH de los alimentos ácidos y de la corrosión bacteriana.
    • Moco:: El contenido de mucina, glicoproteina fundamental de la saliva, produce la viscosidad necesaria para funciones lubricantes y de formación del bolo alimenticio que facilita la deglucióna lo largo del tubo digestivo, sin dañarlo. 6
    • Lisozima: Es una sustancia antimicrobiana que destruye las bacterias contenidas en los alimentos, protegiendo en parte los dientes de la caries y de las infecciones.
    • Enzimas: Como la ptialina, que es una amilasa que hidroliza el almidón parcialmente en la boca, comenzando la digestión de los hidratos de carbono. La lipasa lingual inicia también la digestión de grasas.6
    • Estaterina: Con un extremo amino terminal muy ácido, que inhibe la precipitación de fosfato cálcico al unirse a los cristales de hidroxiapatita. Además, también tiene función antibacteriana y antifúngica.
    • Otras sustancias: La saliva contiene también inmunoglobulinas específicas, transferrina y lactoferrina. En el 2006 investigadores franceses del Instituto Pasteur identificaron una sustancia en la saliva humana que llamaron Opiorfina, similar a la encontrada en ratas y vacas, que es hasta seis veces más potente que la morfina para calmar el dolor. 7 2
    • Calcio: La saliva está saturada de Ca++, con lo que se evita que los dientes lo pierdan y ayuda a digerir el alimento.

    Pruebas salivares en la identificación del
    riesgo de caries. Determinación del flujo salivar.

    Capacidad tampón de la saliva.
    Determinar y cuantificar en la saliva la población de los microorganismos con más potencialidad cariogénica ( estreptococo mutans y lactobacilos)

    Los test basados en la saliva no diagnostican caries, pero sirven para informarnos del riesgo de caries:

    Test de Alban.
    Cuantificación de Lactobacillus y estreptococos del grupo

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  142. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #3)

    OBEJETIVOS:

    . Describir cómo se realizan en clínica los siguientes tests:
    - Determinación de flujo salivar (estimulado y no estimulado)
    - Capacidad tampón (CRT bacteria®)
    - Test de Alban.
    - Recuentos de Lactobacillus y estreptococos del grupo mutans (CRT
    bacteria®)
    3. Evaluar los resultados de dichos tests de actividad de caries.
    4. Usar los tests de actividad de caries para ayudar a determinar el riesgo de caries
    en un compañero.
    5. Estimar las medidas preventivas que crea pertinente instaurar en función de los
    resultados obtenidos.

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  143. 1. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #4)

    DESARROLLO TEORICO

    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un
    examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la
    actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta
    enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera
    hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población
    en dos subgrupos:

    los que presentan una determinada característica, y los que no
    la presentan.

    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a
    las siguientes razones:

    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada
    individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con
    modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.

    Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test
    que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque
    no por ello hayan dejado de ser útiles.

    * El test de Alban y los recuentos microbianos son pruebas que sirven para
    controlar el estado del medio oral del paciente, por lo que deben ser repetidos periódicamente hasta conseguir bajas puntuaciones.
    * El flujo salivar y la capacidad tampón, por el contrario, cuando presentan
    bajas puntuaciones indican alto riesgo y necesidad de implantar medidas
    preventivas, las cuales en ningún caso tienen como fin modificar las puntuaciones
    de estos test, sino contrarrestar los efectos negativos de estas puntuaciones.

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  144. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #5)

    PRIMER CICLO DE PRACTICAS

    * El flujo salivar y la capacidad tampón, por el contrario, cuando presentan
    bajas puntuaciones indican alto riesgo y necesidad de implantar medidas
    preventivas, las cuales en ningún caso tienen como fin modificar las puntuaciones
    de estos test, sino contrarrestar los efectos negativos de estas puntuaciones.

    DETERMINACIÓN DEL FLUJO SALIVAR

    Hay una serie de medicamentos (antihistamínicos, anticolinérgicos,
    antiparkinsonianos, antidepresivos...) y estados patológicos (radioterapia de cabeza
    y cuello, diabetes mellitus, sarcoidosis, ansiedad, estrés. drogadicción...) que
    conllevan una disminución del flujo salivar, que es importante conocer, ya que
    estos pacientes que presentan hiposalivación y xerostomía son de alto riesgo de
    caries.

    Este test está especialmente indicado en aquellos pacientes que tienen
    síntomas de xerostomía: el paciente manifiesta sequedad de boca, tiene los labios
    resecos y, a la exploración, no acumula saliva en el suelo de la boca. En
    condiciones normales no puede considerarse como test de actividad de caries.

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  145. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #6)

    DETERMINACIÓN DE LA SALIVA NO ESTIMULADA

    La determinación de saliva no estimulada tiene mucha importancia ya que
    está relacionada con el tiempo de aclaramiento de azúcar y ácidos de la boca.

    La recogida de saliva no estimulada o en reposo se realiza con el paciente
    sentado en posición relajada, con los codos apoyados en las rodillas. Se debe
    evitar cualquier movimiento de las mejillas o de la mandíbula; la lengua se apoya
    en las superficies linguales de los incisivos superiores. En esta posición, el paciente
    dobla la cabeza hacia delante y va dejando gotear la saliva pasivamente sin tratar
    de escupir ni masticar.

    La saliva se recoge en un tubo graduado durante 5 minutos. Los resultados
    se expresan en ml/min, existiendo amplias variaciones entre las personas.
    TASA DE SECRECIÓN NORMAL........................................: 0.25-0.35ml/min
    TASA DE SECRECIÓN BAJA ................................................: 0.1-0.25ml/min

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  146. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #7)

    DETERMINACIÓN DE LA SALIVA ESTIMULADA

    Esta tasa es más práctica y, por lo tanto, es a menudo realizada en la
    clínica. El paciente debe masticar una cápsula de parafina estéril de
    aproximadamente 1 gr. (se empleará parafina con un punto de fusión de 42-44°C),
    e ir recogiendo toda la saliva que segregue en un tubo graduado durante 5
    minutos. Es preferible desechar la saliva producida en los 2 primeros minutos y
    empezar a contar a partir de ese momento; de esta forma se arrastran restos
    residuales que queden en boca. Se puede reducir la formación de espuma

    TESTS DE ACTIVIDAD DE CARIES
    29

    Introduciendo el tubo graduado en un recipiente con hielo o añadiendo una gota de
    octanol.

    El resultado se expresa en ml/min y, al igual que ocurre con la saliva no
    estimulada, la tasa es muy variable entre diferentes personas.
    TASA DE SECRECIÓN NORMAL.......................................: >1ml/min.
    TASA DE SECRECIÓN BAJA.......................................... : <0.7ml/min.

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  147. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #8)

    MEDIDAS DE ACTUACION

    Si el déficit salivar es funcional y no hay lesión estructural de las glándulas
    salivares, es posible estimular el flujo salivar administrando pilocarpina.
    Cloruro de

    pilocarpina.................................................................: 0.3 gr.
    Agua destilada.............................................................................: 15 ml.

    Tomar 5 gotas tres veces al día al comienzo de las comidas, y aumentar la
    dosis 1 gota por día hasta ingerir 8-10 gotas por dosis. También se puede utilizar
    una solución acuosa al 0.2% de pilocarpina oftálmica. La pilocarpina produce
    transpiración y aumento de la motilidad gástrica.

    Si el déficit de secreción salivar se debe a atrofia de las glándulas es muy
    difícil estimular el flujo salival. Los pacientes en estos casos pueden enjuagarse la
    boca frecuentemente con agua, agua con glicerina o agua con bicarbonato sódico
    (1 cucharada de té por litro). También se ha propuesto un "sustituto" de la saliva,
    así como goma de mascar hidrófila que alivia la sintomatología de estos pacientes. PRÁCTICA 2
    30

    LOS PACIENTES QUE DE FORMA PERMANENTE TIENEN DISMINUIDO
    EL FLUJO SALIVAR DEBEN HACER TODOS LOS ESFUERZOS PARA
    PRESERVAR LOS DIENTES MEDIANTE CONTROL DE PLACA,
    CONTROL DE DIETA Y USO DIARIO DE FLÚOR O
    FLÚOR+CLORHEXIDINA.

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  148. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #9)

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD TAMPON DE LA SALIVA

    Los sistemas tampón salivares corrigen las variaciones de pH causadas por
    los cambios de concentración de iones ácidos o básicos producidos, por ejemplo,
    por la fermentación de los azúcares.

    En la saliva, dicha amortiguación es llevada a cabo por el sistema ácido carbónico/bicarbonato, sistema fosfato y, en menor, medida por las proteínas
    salivares. De todos ellos, el bicarbonato es el sistema neutralizante más importante
    de la saliva.

    Este sistema tampón se basa en el siguiente equilibrio:
    CO2 + H2
    O <======> H2
    CO3 <======> HCO3
    -
    + H+
    H2
    CO3 ........ Ácido carbónico
    HCO3 ......... Ion bicarbonato
    CO2 ........... Dióxido de carbono

    Aunque existen diversos métodos, la determinación de la capacidad tampón
    se realiza en la actualidad mediante algunos sistemas simplificados que se basan
    en el método de Ericsson que se describe a continuación: A 1ml de saliva
    estimulada se añaden 3 ml. de HCL 0.005 M junto con una gota de octanol (impide
    la formación de espuma). La mezcla se coloca en un sistema de aireación que
    burbujea aire lentamente a través de la saliva. Después de 20 min. se mide el pH.

    Los H+
    del HCL desvían la reacción a la izquierda formándose CO2 que se libera
    casi totalmente debido a la aireación. El pH final es un fiel reflejo de la
    concentración original de HCO3. De esta forma se obtienen valores que están
    relacionados con la capacidad tampón de ambos sistemas (bicarbonato y fosfato),
    ya que éstos actúan juntos.

    El valor de la capacidad tampón es un parámetro que, aunque puede variar,
    es razonablemente estable, teniendo su mayor importancia clínica, en relación con
    el riesgo de caries, cuando los valores son inferiores a 5.5.

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  149. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #10)

    DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD TAMPÓN POR EL SISTEMA CRT BUFFER.

    Se basa en el método de Ericsson. La mayor diferencia con respecto a él
    estriba en que se suprime el paso de la corriente de aire; y se obtienen casi los
    mismos resultados que con el método original.

    El equipo consta de una tira de papel en cuyo extremo lleva una almohadilla
    impregnada con la solución ácida y con el indicador de pH, cápsulas de parafina y
    pipetas desechables.

    1. Utilizamos saliva estimulada.
    2. Colocamos una tira soporte en una superficie firme y absorbente con la
    almohadilla tratada hacia arriba.
    3. Pipeteamos una gota de saliva estimulada en la almohadilla. La gota
    debe ser lo suficientemente grande para cubrirla entera.
    4. Esperamos 5 min. de reacción antes de la lectura.

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  150. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSITIVA #11)

    EVALUACION

    Se realiza comparando el color final de la almohadilla con una escala de
    colores de 3 valores diferentes.
    BAJO: pH <4.......... Color amarillento o marrón
    MEDIO: pH 4.5-5.5..... Color verde
    ALTO: pH >6.......... Color azul

    Puede ocurrir que el color no esté bien definido, o bien aparezcan varios
    colores; en este caso se debe interpretar la capacidad buffer por su valor inferior.
    Esta reacción en forma de manchas sobre la almohadilla puede deberse a que la
    mucina salivar impide una buena impregnación de ésta.

    Los pacientes con valores muy bajos son considerados pacientes de alto
    riesgo de caries. No hay documentación clínica que nos permita aclarar el posible
    efecto protector en aquellos casos con una alta capacidad tampón.

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  151. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #12)

    MEDIDA DE LA CAPACIDAD ACIDIFICANTE DE LA SALIVA

    METODO DE SNYDER

    Objetivos:

    El estudiante debe ser capaz de:

    1. Relacionnar la produccion de acido por algunas bacterias de la boca con la susceptibilidad a la caries.

    2. Nombrar los principales microorganismos relacionados con la caries dental.

    3. Conocer la constitucion del medio de Snyder:

    INTRODUCCION:

    En la aparicion de la caries hay que tener en cuenta:

    -S.Mutans se une al esmalte, metaboliza disacaidos y acidifica el Ph.
    -Conforme mas se acidifica, mas deificil le resulta crecer, pero:

    -Lactobacillus comienza a crecer y a acidificar mas el medio; Destruccion del esmalte= caries.

    El medio de Snyder mide la produccion de acidos a partir del metabolismo de la glucosa por los microorganismos de la saliva.

    Esta compuesto por: Glucosa, purpura de bromocresol, triptosa, CLNy, y agar y su Ph es de 4.8. Cuando desciende a 4.6 o menos el indicador vira a amarillo.

    Mareriales y medios que se usan en la practica:

    Medio de Snyder en tubo.
    Placa de petri esteril.
    Pipeta de bulbo esteril.
    Siembra del medio de Snyder.
    Calentar el medio de Snyder hasta que se licue.
    Recoger la saliva en una placa de petri.
    Con la pipeta, homgeneizar la saliva.
    Pipetear 0.2 ml. de saliva en el medio de 45 grados celsius.
    Mover el ubo entre las palmas de las manos para mezclar la saliva con el medio.
    Solidificar en posicion vertical.
    Observar a las 24 y 48 horas.

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  152. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #13)

    TEST DE ALBAN

    El test de Alban (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se
    basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva
    estimulada es inoculada en el medio de Snyder.

    Dicho medio, de pH 4.7, contiene,
    entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de pH.

    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa
    produciendo ácido, lo cual origina una bajada de pH que modifica el color verde
    original del medio virando al amarillo.

    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de
    rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:

    1. Se retira de la nevera (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de
    realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en
    que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal
    estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el
    tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºC durante 72 horas.

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  153. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #14)

    TEST DE ALBAN
    EVALUACION

    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la
    profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las
    24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0.....No hay cambio de color
    1.....Cambia 1/4 del tubo
    2.....El viraje abarca 1/2 tubo
    3.....Hasta 3/4 del tubo
    4.....Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza
    lentamente.

    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de
    hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa...), esto no siempre es así;
    por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor.
    Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y
    dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede
    "ver" sus progresos.

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  154. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #15)

    RECUENTOS SALIVARES DE LACTOBACILLUS ACIDOPHILLUS

    Lactobacillus, al igual que estreptococos del grupo mutans, son
    microorganismos que están estrechamente relacionados con la caries dental.
    Concretamente Lactobacillus parece estar vinculado con la progresión de caries en
    dentina. La dificultad clínica de efectuar recuentos microbianos en placa bacteriana
    ha propiciado que sean los recuentos en saliva los que se hayan protocolizado y
    adaptado para su uso en el consultorio dental.

    El método clásico o estándar para determinar el número de Lactobacillus
    consistía en emplear placas de Petri con una determinada cantidad de medio
    selectivo, que en este caso es el agar Rogosa.

    La saliva estimulada era diluida de
    forma seriada y, tras la inoculación en el medio y posterior incubación, se realizaba
    el recuento, refiriéndose el resultado como número de colonias/ml de saliva. Este
    sistema era inviable en clínica.

    En la actualidad hay varios sistemas simplificados de detección y
    enumeración, que tienen la ventaja de poderse usar en el consultorio dental y de
    que los resultados pueden ser mostrados al paciente, lo cual tiene gran interés en
    la motivación de éste.

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  155. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #16)

    RECUENTOS SALIVARES DE STREPTOCOCOS MUTANS

    La forma clásica de realizar recuentos salivares de esta bacteria es similar a
    lo descrito anteriormente para Lactobacillus, con la única diferencia del medio
    selectivo que en este caso es el agar Mitis Salivarius suplementado con sacarosa y
    bacitracina.

    Para hacer asequible este test en la clínica odontológica se han desarrollado
    sistemas más sencillos que se pueden emplear en el consultorio y se correlacionan
    bien con la técnica convencional en agar. Se describe a continuación el CRT®
    bacteria).

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  156. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #17)

    CRT BACTERIA (PASO A PASO)

    1.Provision de parafina al paciene.
    2.Paciente salivando dentro de un recipiente.
    3.Frasco con medio de cultivo y pastilla de bacitracina.
    4.Frasco con pastilla de bacitracina.
    5.Tapar y rotular
    6.Se toma una muestra de saliva vertida.
    7. Se humedece una sola superficie del porta agar.
    8. Humedeces ambas superficies del porta agar con un frasco.
    9.Se coloca el porta agar en el frasco de pruebas y se cierra.
    10.Se mantiene el tubo verticalmente durante 48 horas en una estufa a 37 grados celsius.
    11. Se compara el resultado con la cartilla de valoracion; el lado azul del agar es para steptococcus mutans y el lado verde del agar es para lactobacillus.

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  157. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #18)

    CRT® BACTERIA PARA LB y SM (Vivadent, Schaan, Liechtenstein)

    Este sistema consta de una lengüeta de plástico recubierta por ambos lados
    por medios selectivos y conectada a un tapón de rosca el cual cierra un tubo transparente, quedando el dispositivo seguro para su almacenamiento e
    incubación, conservándose estéril y húmedo. Una de las superficies de la lengüeta
    está cubierta por agar Rogosa, para recuentos de LB (color verde) y en la otra cara
    con agar Mitis Salivarius Bacitracina para recuentos de SM (color azul oscuro). El
    kit también incorpora cápsulas de parafina, tabletas de NaHCO3 y etiquetas de
    identificación. La dinámica de utilización es la siguiente:

    1. Se recoge saliva estimulada como ya se ha visto anteriormente.
    2. Desenroscar el tapón, y extraer el porta agar del interior del tubo.
    3. Se coloca una tableta de NaHCO3 en la base del tubo.
    4. Retirar con cuidado las láminas protectoras de ambas superficies de agar,
    teniendo cuidado de no tocar el mismo.
    5. Se vuelca la saliva con cuidado sobre las dos superficies del agar con ayuda
    de una pipeta, sin arañar las mismas y de forma que queden humedecidas.
    En esta operación se mantiene la lengüeta en posición vertical y se deja
    gotear la saliva sobrante.
    6. Eliminar las últimas gotas de saliva dejando escurrir un ángulo del borde
    inferior de la lengüeta con el agar sobre papel absorbente limpio y enroscar
    el tapón y cerrarlo bien.
    7. Se identifica el tubo con una etiqueta adhesiva y se incuba a 36±1ºC
    durante 48 horas en posición vertical.

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  158. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #19)

    Interpretación
    La lectura de los resultados se realiza comparando la densidad de
    crecimiento de colonias de Lactobacillus y de estreptococos del grupo mutans de
    las lengüetas con una tabla de densidad ya establecida. La colonias de
    Lactobacillus son blanquecinas o transparentes y las de estreptococos del grupo
    mutans son de color azul oscuro casi negras. Los resultados se interpretan como
    unidades formadoras de colonias/ml de saliva (ufc/ml). La lectura de la prueba es
    más fácil si se examina bajo luz reflejada. Debemos comparar densidad de
    crecimiento y no el área de las colonias ya que nos podemos encontrar pocas
    colonias pero muy grandes.
    RECUENTO ALTO....... >100 000 ufc/ml saliva
    RECUENTO BAJO....... <100 000 ufc/ml saliva

    Los recuentos altos de Lactobacillus indican un número elevado de caries
    abiertas o de obturaciones desbordantes. Si se procede a tapar las lesiones y los
    valores se mantienen elevados, indica elevada frecuencia de ingestión de hidratos
    de carbono.

    ESTE TEST TIENE UTILIDAD PARA EVALUAR PROGRAMAS CONTROL DE
    PLACA Y DIETA.
    LOS RECUENTOS ALTOS DE ESTREPTOCOCOS DEL GRUPO MUTANS

    INDICAN UN RIESGO MICROBIOLÓGICO ALTO DE CARIES.

    Esta contraindicado realizarlos durante tratamientos con antibióticos
    (esperar al menos 14 días), y si se utilizan colutorios antimicrobíanos se debe
    esperar 12 horas. Al desecharlos no se debe olvidar que son cultivos microbianos
    que deben ser manejados con cuidado.

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  159. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #21)

    SEGUNDO CICLO DE PRACTICAS

    FLORA DE LA BOCA. BACTERIAS ANAEROBIAS

    Diagnostico directo y molecular de las enfermedades infecciosas:

    DIA 1:
    A) tipos de respiracion bacteriana. Medios de cultivos para anaerobios.


    B) prueba de Snyder: determinacion de la susceptibilidad a la caries.

    DIA 2:

    A) observacion de los cltivos.

    B) Diagnostico indirecto de las enfermedades infecciosas. Prueba de microaglutinacion.

    DIA 3:

    A) lectura de la prueba de Snyder.

    B) lectura e interpretacion de la prueba de microaglutinacion.

    C) diagnostico indireto: pruebas confirmatorias.

    D) diagnostico molecular.

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  160. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #22)

    CULTIVO DE ANAEROBIOS

    Las bacterias se clasifican de acuerdo a su tolerancia con el O2 en:

    -Anaerobias estrictas: crecen con <0.5% de presion de O2.
    -Anaerobias facultativas: tolera >3% de presion de O2.
    -Microaerofilas: crecen de 5-10% de presion de O2.
    -Aerobias estrictas: crecen con >10% de presion de O2.

    Las bacterias anaerobias constituyen la flora normal predominante en el ser humano, especialmente en la boca. El cultivo de especies anaerobias es dificil por:

    1) las dificultades tecnicas para garantizar la anaerobiosis durante la manipulacion de la muestra y su posterior cultivo.

    2)La frecuente presencia de mezclas complejas de especies anaerobias y facultaivas.

    3) los requerimientors nutricionales de medios enriquecidos.

    Para considerar un aislado bateriano como una especie anaerobia, es necesario comprobar primero que no es aerotolerante. Para ello se subcultiva en dos medios, incubando no de ellos en condiciones de anaerobiosis y el otro en aerobiosis. Trs 24 horas de incubacion se examinan las placas y e comparan los conocimientos.

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  161. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #23)

    MICROORGANISMOS QUE SE VAN A PROCESAR EN LA PRACTICA:

    -bacilo grampositivo anaerobio (clostridium.
    -bacilo gramnegativo anaerobio (bacteroides).


    Se sugiere que todas las muestras clínicas provenientes de sitios probables de ser colonizados por anaerobios sean cultivadas en medios para anaerobios .

    Los medios de aislamiento primario requieren de medios de cultivo líquidos y sólidos, el medio tioglicolato suplementado con Vit K, hemina y bicarbonato es ampliamente aceptado porque no requiere de incubación anaeróbica.

    En cuanto a los medios sólidos un número de diferentes formulaciones cumplen con las especificaciones requeridas como son: Agar Sangre+Suplementos, Agar Schaedler, Agar Brucella, Agar Sangre+ Suplemento+ Inhibidores, etc.. Estos medios son útiles para acelerar el proceso de aislamiento e identificación. Como un mínimo de medios a utilizar se recomienda la inoculación de la muestra en: tioglicolato suplementado, y una placa de Agar sangre + Suplemento , en casos de infecciones polimicrobianas se recomienda utilizar además, una placas de Agar Sangre+ Suplemento+ Inhibidores. Los medios selectivos sólidos deben inocularse abundantemente.

    Una vez inoculados los medios deben ser incubados en una atmósfera de anaerobiosis, ya sea en una jarra con generadores de gas que operan transformando el O2 en H2 y CO2 una vez que se agrega agua al generador en presencia de un catalizador de paladio.
    Alternativamente puede utilizarse una mezcla de gasen en la incubadora que está compuesta por 5-10% de H2, 5-10% CO2, 80-90% N2.

    Normalmente los cultivos deben ser incubados por un mínimo de 48 hrs. Algunos anaerobios requieren mayor tiempo, hasta 3 días para tener colonias visibles.

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  162. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #24)

    INCUBACIÓN EN CONDICIONES ANAEROBIAS:

    Las placas de agar brucella se incuban en jarras de anaerobiosis que se cierran hermeticamente con un sobre generadoren su interior. Este sobre, mediante una reaccion quimica, genera H@ y CO2 que desplazan al CO2 en el interior de la jarra.

    SIEMBRA EN MEDIO DE TIOGLICOLALO:

    Coger una colonia con el asa previamente esterelizada con la llama del mechero, e introducir en el tubo hasta el fondo y sacarlo. Flamear la boca del tubo antes y despues de introducir el asa.

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  163. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #25)

    PRUEBA DE SNYDER (SUSCEPTIBILIDAD A LA CARIES DENTAL)

    La prueba de Snyder consiste en incubar una muestra de saliva, estimulada con parafina, mezclada con verde de bromocresol y agar dextrosa, con pH de 5.0 a 37° C por tres días. Un cambio del indicador hacia el color amarillo (el color verde ya no predomina, el pH es de 4.2 o menor) en 24 horas indica una actividad de caries elevada, si no hay cambio a las 72 la actividad cariogénica es baja.

    Esto se llevará a cabo para demostrar a profesores, padres de familia y alumnos, qué tanto influye la condición socioeconómica y los hábitos alimenticios y de higiene bucal en la incidencia de caries entre un estrato social mas elevado y otro de menores recursos.

    Con todo esto se pretendió crear conciencia para que se mejoren los hábitos de higiene bucal en los niños, sin importar el nivel socioeconómico del que provengan, y así tratar de erradicar en mayor número el índice de caries en niños Se ha demostrado que existe un polimorfismo genético de la saliva, dichos factores biológicos, como la nutrición, así como características fisiológicos especificas se pueden modificar su contenido y función además se presenta una variación individual que influyen en la prevalecía de caries dental y otras enfermedades dentales.

    Establecimiento de un rango de valores normales presenta el pase inicial para determinar dichas variaciones individuales. A pesar de esto poco se conoce de las características fisiológicas y biológicas que determinan la composición de la saliva en diferentes poblaciones.

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  164. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES (DIAPOSIVA #26)

    DIA 2: OBSERVACION DE LOS CULTIVOS

    A) OBSERVACION DEL RESULTADO DE LOS CULTIVOS

    Medios solidos: especificar en que condiciones atmosfericas han sido capaces de crecer el microorganismo conmparando la placa ncubada en anaerobiosis y la incubada en anaerobiosis. Describir los tipos de colonias, color, brillo, hemolisis, bordes, diametro, olor....

    Tioglicolato: especificar formas de cricimieno y tipos de respiracion.

    Medio de Snyder: anotar los cambios de color

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  165. CRT TEST DE RIESGO DE CARIES

    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.


    Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un
    examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la
    actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta
    enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera
    hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población
    en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no
    la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a
    las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada
    individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con
    modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.

    Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test
    que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque
    no por ello hayan dejado de ser útiles.

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  166. Test de Riesgo de Caries
    El riesgo de caries es la determinación de la probabilidad de la incidencia de caries (número de nuevas caries) durante un cierto periodo de tiempo.
    Pruebas salivares:
    • Medición del flujo salivar
    • Capacidad tampón de la misma
    • Determinar y cuantificar en la saliva la población de los microorganismos con más potencialidad cariogénica ( estreptococo mutans y lactobacilos)
    Los test basados en la saliva no diagnostican caries, pero sirven para informarnos del riesgo de caries.

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  167. Así como las lesiones de caries son detectadas fácilmente por medio de un examen clínico junto con radiografías interproximales, este examen no predice la actividad de caries ni indica la susceptibilidad de un paciente a sufrir esta enfermedad. Sería de gran utilidad disponer de un test fácil y sencillo que pudiera hacerlo, entendiendo por test aquella prueba que permite diferenciar una población en dos subgrupos: los que presentan una determinada característica, y los que no la presentan.
    La necesidad de los test de actividad de caries se debe fundamentalmente a las siguientes razones:
    • Determinar la necesidad y la extensión de medidas preventivas en cada individuo.
    • Indicar el éxito de medidas preventivas y terapéuticas.
    • Motivación y control de programas educativos relacionados con modificaciones dietéticas y de higiene oral.
    • Indicar la conveniencia de tratamientos restauradores complicados.

    Se describirá a continuación cómo se realizan en la práctica aquellos test
    Que tienen hoy día más validez, incluyendo también algunos más clásicos, aunque
    No por ello hayan dejado de ser útiles.

    * El test de Alban y los recuentos microbianos son pruebas que sirven para
    Controlar el estado del medio oral del paciente, por lo que deben ser repetidos periódicamente hasta conseguir bajas puntuaciones.

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  168. El flujo salivar y la capacidad tampón, por el contrario, cuando presentan
    Bajas puntuaciones indican alto riesgo y necesidad de implantar medidas
    Preventivas, las cuales en ningún caso tienen como fin modificar las puntuaciones
    De estos test, sino contrarrestar los efectos negativos de estas puntuaciones.

    DETERMINACIÓN DEL FLUJO SALIVAR
    Hay una serie de medicamentos (antihistamínicos, anticolinérgicos,
    Antiparkinsonianos, antidepresivos...) Y estados patológicos (radioterapia de cabeza
    Y cuello, diabetes mellitus, sarcoidosis, ansiedad, estrés. Drogadicción...) Que
    Conllevan una disminución del flujo salivar, que es importante conocer, ya que
    Estos pacientes que presentan hiposalivación y xerostomía son de alto riesgo de
    Caries.
    Este test está especialmente indicado en aquellos pacientes que tienen
    Síntomas de xerostomía: el paciente manifiesta sequedad de boca, tiene los labios
    Resecos y, a la exploración, no acumula saliva en el suelo de la boca. En
    Condiciones normales no puede considerarse como test de actividad de caries.

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  169. Determinación del flujo salival no estimulad:
    Utilizamos un recipiente calibrado en mililitros (ml) para la recolección de la saliva. Una vez observados los pasos expuestos anteriormente, se mandó al paciente a acumular saliva durante un período total de cinco (5) minutos en la boca sin tragar6. Para la obtención de los datos de Flujo Salival No Estimulado se dividió la cantidad de ml de saliva obtenida en el recipiente calibrado entre 5 con lo cual obtenemos el Flujo Salival no Estimulado por minuto.

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  170. Determinación del flujo salival estimulado:
    Observados los pasos expuestos anteriormente considerados para la toma del Flujo Salival no Estimulado, procedimos a colocar en la boca del paciente una cápsula de parafina para estimular la producción de saliva.

    Se coloca la cápsula de parafina en la boca hasta que se ponga blanda (30 seg.), se le indica al paciente que trague la saliva que se produjo durante este tiempo.

    Posteriormente se manda al paciente a masticar la parafina durante un período de cinco (5) minutos y luego debe expulsar la saliva acumulada durante este tiempo en el recipiente calibrado.

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  171. Medidas de actuación
    Si el déficit salivar es funcional y no hay lesión estructural de las glándulas
    Salivares, es posible estimular el flujo salivar administrando pilocarpina.
    Cloruro de pilocarpina.................................................................: 0.3 gr.
    Agua destilada.............................................................................: 15 ml.
    Tomar 5 gotas tres veces al día al comienzo de las comidas, y aumentar la
    Dosis 1 gota por día hasta ingerir 8-10 gotas por dosis. También se puede utilizar
    Una solución acuosa al 0.2% de pilocarpina oftálmica. La pilocarpina produce
    Transpiración y aumento de la motilidad gástrica.
    Si el déficit de secreción salivar se debe a atrofia de las glándulas es muy
    Difícil estimular el flujo salival. Los pacientes en estos casos pueden enjuagarse la
    Boca frecuentemente con agua, agua con glicerina o agua con bicarbonato sódico
    (1 cucharada de té por litro). También se ha propuesto un "sustituto" de la saliva,
    Así como goma de mascar hidrófila que alivia la sintomatología de estos pacientes.

    LOS PACIENTES QUE DE FORMA PERMANENTE TIENEN DISMINUIDO
    EL FLUJO SALIVAR DEBEN HACER TODOS LOS ESFUERZOS PARA
    PRESERVAR LOS DIENTES MEDIANTE CONTROL DE PLACA,
    CONTROL DE DIETA Y USO DIARIO DE FLÚOR O
    FLÚOR+CLORHEXIDINA.

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  172. Capacidad Amortiguadora o Buffer: la función amortiguadora de la saliva se debe principalmente a la presencia del bicarbonato ya que la influencia del fosfato es menos extensa. La capacidad amortiguadora es la habilidad de la saliva para contrarrestar los cambios de ph. (12)

    Esta propiedad ayuda a proteger a los tejidos bucales contra la acción de los ácidos provenientes de la comida o de la placa dental, por lo tanto, puede reducir el potencial cariogénico del ambiente.(9) Los amortiguadores funcionan convirtiendo una solución ácida o alcalina altamente ionizada, la cual tiende a alterar el ph, en una solución más débilmente ionizada (que libere pocos H+ o OH-). El principal amortiguador de la saliva es el bicarbonato, cuya concentración variará de acuerdo al flujo salival; el fosfato y las proteínas también actúan como amortiguadores salivales. (13,14)

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  173. DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD TAMPÓN POR EL SISTEMA CRT BUFFER.
    Se basa en el método de Ericsson. La mayor diferencia con respecto a él
    Estriba en que se suprime el paso de la corriente de aire; y se obtienen casi los
    Mismos resultados que con el método original.
    El equipo consta de una tira de papel en cuyo extremo lleva una almohadilla
    Impregnada con la solución ácida y con el indicador de ph, cápsulas de parafina y
    Pipetas desechables.
    TESTS DE ACTIVIDAD DE CARIES

    1. Utilizamos saliva estimulada.
    2. Colocamos una tira soporte en una superficie firme y absorbente con la
    Almohadilla tratada hacia arriba.
    3. Pipeteamos una gota de saliva estimulada en la almohadilla. La gota
    Debe ser lo suficientemente grande para cubrirla entera.
    4. Esperamos 5 min. De reacción antes de la lectura.

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  174. Evaluación
    Se realiza comparando el color final de la almohadilla con una escala de
    Colores de 3 valores diferentes.
    BAJO: ph <4.......... Color amarillento o marrón
    MEDIO: ph 4.5-5.5..... Color verde
    ALTO: ph >6.......... Color azul
    Puede ocurrir que el color no esté bien definido, o bien aparezcan varios
    Colores; en este caso se debe interpretar la capacidad buffer por su valor inferior.
    Esta reacción en forma de manchas sobre la almohadilla puede deberse a que la
    Mucina salivar impide una buena impregnación de ésta.
    Los pacientes con valores muy bajos son considerados pacientes de alto
    Riesgo de caries. No hay documentación clínica que nos permita aclarar el posible
    Efecto protector en aquellos casos con una alta capacidad tampón.

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  175. TEST DE SNYDER:

    El test de snyder es usado para ver la susceptibilidad de una persona a las caries. La susceptibilidad se relaciona con la producción de acido que se asume debida a la fermentación de los azucares por las bacterias cariogenicas.
    Este test cultiva muestras de saliva en medios adecuados para el crecimiento de bacterias acidofilas (como las orales) y su producción de acidos.
    El medio es una agar con glucosa al 2% y el indicador de ph “verde bromocresol”. Este medio tiene un ph de 4.8 y puede variar a amarillo si alcanza el 4.4. Esta prueba usa 5 tubos de este medio y compara el viraje entre ellos. Según el viraje de color en el medio de cultivo resultara en una mayor o menos susceptibilidad a razón de mas viraje, mas riesgo.

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  176. El test de Alban

    (simplificación del test colorimétrico ideado por Snyder) se
    Basa en la capacidad de la saliva de producir ácido cuando una muestra de saliva
    Estimulada es inoculada en el medio de Snyder. Dicho medio, de ph 4.7, contiene,
    Entre otros componentes, glucosa, agar y verde bromocresol como indicador de ph.
    Los microorganismos contenidos en la saliva metabolizan la glucosa
    Produciendo ácido, lo cual origina una bajada de ph que modifica el color verde
    Original del medio virando al amarillo.
    Para realizar el test de Alban necesitamos tubos de ensayo con tapón de
    Rosca, con 5 cc de medio de Snyder. La sistemática a seguir será la siguiente:
    1. Se retira de la nevera (deben mantenerse en frío) el tubo un rato antes de
    Realizar la prueba para que estén a temperatura ambiente en el momento en
    Que se vayan a utilizar.
    2. El paciente salivará dentro del tubo ayudado de un embudo de cristal
    Estéril la suficiente cantidad de saliva como para cubrir el medio. Se tapa bien el
    Tubo con tapón de rosca.
    3. Incubamos en estufa a 36±1ºc durante 72 horas.

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  177. Evaluación
    Se realiza en base a un viraje de color del verde original al amarillo y a la
    Profundidad del cambio de color.
    La lectura se realiza a las
    24, 48 y 72 horas, anotándose los resultados.
    0.....No hay cambio de color
    1.....Cambia 1/4 del tubo
    2.....El viraje abarca 1/2 tubo
    3.....Hasta 3/4 del tubo
    4.....Cambia de color todo el tubo
    Un cambio muy rápido en el tiempo (24 horas) es peor que si éste se realiza
    Lentamente.

    Aunque una prueba positiva indica riesgo de caries (elevada ingesta de
    Hidratos de carbono, caries abiertas, acúmulo de placa...), esto no siempre es así;
    Por el contrario, una prueba negativa nos indica un desafío ambiental menor.
    Esta prueba es muy útil para:
    1. Valorar los progresos conseguidos en programas de control de placa y
    Dieta.
    2. Como ayuda para facilitar la motivación del paciente, ya que éste puede
    "ver" sus progresos.

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  178. RECUENTOS SALIVARES DE LACTOBACILLUS
    Lactobacillus, al igual que estreptococos del grupo mutans, son
    Microorganismos que están estrechamente relacionados con la caries dental.
    Concretamente Lactobacillus parece estar vinculado con la progresión de caries en
    Dentina. La dificultad clínica de efectuar recuentos microbianos en placa bacteriana
    Ha propiciado que sean los recuentos en saliva los que se hayan protocolizado y
    Adaptado para su uso en el consultorio dental.
    El método clásico o estándar para determinar el número de Lactobacillus
    Consistía en emplear placas de Petri con una determinada cantidad de medio
    Selectivo, que en este caso es el agar Rogosa. La saliva estimulada era diluida de
    Forma seriada y, tras la inoculación en el medio y posterior incubación, se realizaba
    El recuento, refiriéndose el resultado como número de colonias/ml de saliva. Este
    Sistema era inviable en clínica.
    En la actualidad hay varios sistemas simplificados de detección y
    Enumeración, que tienen la ventaja de poderse usar en el consultorio dental y de
    Que los resultados pueden ser mostrados al paciente, lo cual tiene gran interés en
    La motivación de éste.

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  179. RECUENTOS SALIVARES DE ESTREPTOCOCOS DEL GRUPO MUTANS
    La forma clásica de realizar recuentos salivares de esta bacteria es similar a
    Lo descrito anteriormente para Lactobacillus, con la única diferencia del medio
    Selectivo que en este caso es el agar Mitis Salivarius suplementado con sacarosa y
    Bacitracina.
    Para hacer asequible este test en la clínica odontológica se han desarrollado
    Sistemas más sencillos que se pueden emplear en el consultorio y se correlacionan
    Bien con la técnica convencional en agar. Se describe a continuación el CRT®
    Bacteria).

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  180. CRT bacteria:
    La prueba de riesgo a caries CRT bacteria , permite la determinación simultánea del número de estreptococo mutans y de lactobacilos en la saliva por medio de agares selectivos. El agar mitis salivarius con bacitracina sirve para el registro de los estreptococos mutans; y el medio de cultivo claro, el agar de Rogosa sirve para la evaluación de los lactobacilos. Los agares llevan unas láminas que los protegen de la contaminación y evitan que se deshidraten y el soporte impide que los medios de cultivo se escurran.

    También se mide el índice de flujo salival y la capacidad amortiguadora. La saliva tiene un papel muy importante en el mantenimiento de boca y dientes sanos, adoptando para ello numerosas funciones de protección:-lavar
    -humectar
    -defender de las bacterias
    -eliminar alimentos
    -transportar elementos protectores

    Sólo puede llevar a cabo sus funciones de forma satisfactoria si las glándulas salivales la producen en cantidad suficiente, existen circunstancias que se puede reducir el flujo salival como:
    -Ingestión de ciertos medicamentos
    -Distintas enfermedades
    -Radioterapia en la zona de la cabeza
    -Estreés

    Si la saliva no se producen en las cantidades necesarias su acción protectora falla y el riesgo a caries aumenta.

    Por lo que con está prueba se determina el indice de flujo salival, tomando con la pipeta una muestra de saliva y colocándola en el papel testigo después de un minuto se verifica con la tabla el cambio de color y el riesgo alto (violeta), mediano (bronce) o amarillo (bajo) a caries.

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  181. CRT® BACTERIA PARA LB y SM (Vivadent, Schaan, Liechtenstein)
    Este sistema consta de una lengüeta de plástico recubierta por ambos lados
    Por medios selectivos y conectada a un tapón de rosca el cual cierra un tubo

    Transparente, quedando el dispositivo seguro para su almacenamiento e
    Incubación, conservándose estéril y húmedo. Una de las superficies de la lengüeta
    Está cubierta por agar Rogosa, para recuentos de LB (color verde) y en la otra cara
    Con agar Mitis Salivarius Bacitracina para recuentos de SM (color azul oscuro). El
    Kit también incorpora cápsulas de parafina, tabletas de nahco3 y etiquetas de
    Identificación. La dinámica de utilización es la siguiente:
    1. Se recoge saliva estimulada como ya se ha visto anteriormente.
    2. Desenroscar el tapón, y extraer el porta agar del interior del tubo.
    3. Se coloca una tableta de nahco3 en la base del tubo.
    4. Retirar con cuidado las láminas protectoras de ambas superficies de agar,
    Teniendo cuidado de no tocar el mismo.
    5. Se vuelca la saliva con cuidado sobre las dos superficies del agar con ayuda
    De una pipeta, sin arañar las mismas y de forma que queden humedecidas.
    En esta operación se mantiene la lengüeta en posición vertical y se deja
    Gotear la saliva sobrante.
    6. Eliminar las últimas gotas de saliva dejando escurrir un ángulo del borde
    Inferior de la lengüeta con el agar sobre papel absorbente limpio y enroscar
    El tapón y cerrarlo bien.
    7. Se identifica el tubo con una etiqueta adhesiva y se incuba a 36±1ºc
    Durante 48 horas en posición vertical.

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  182. Interpretación
    La lectura de los resultados se realiza comparando la densidad de
    Crecimiento de colonias de Lactobacillus y de estreptococos del grupo mutans de
    Las lengüetas con una tabla de densidad ya establecida. La colonias de
    Lactobacillus son blanquecinas o transparentes y las de estreptococos del grupo
    Mutans son de color azul oscuro casi negras. Los resultados se interpretan como
    Unidades formadoras de colonias/ml de saliva (ufc/ml). La lectura de la prueba es
    Más fácil si se examina bajo luz reflejada. Debemos comparar densidad de
    Crecimiento y no el área de las colonias ya que nos podemos encontrar pocas
    Colonias pero muy grandes.
    RECUENTO ALTO....... >100 000 ufc/ml saliva
    RECUENTO BAJO....... <100 000 ufc/ml saliva
    Los recuentos altos de Lactobacillus indican un número elevado de caries
    Abiertas o de obturaciones desbordantes. Si se procede a tapar las lesiones y los
    Valores se mantienen elevados, indica elevada frecuencia de ingestión de hidratos
    De carbono.
    ESTE TEST TIENE UTILIDAD PARA EVALUAR PROGRAMAS CONTROL DE
    PLACA Y DIETA.
    LOS RECUENTOS ALTOS DE ESTREPTOCOCOS DEL GRUPO MUTANS
    INDICAN UN RIESGO MICROBIOLÓGICO ALTO DE CARIES.
    Esta contraindicado realizarlos durante tratamientos con antibióticos
    (esperar al menos 14 días), y si se utilizan colutorios antimicrobíanos se debe
    Esperar 12 horas. Al desecharlos no se debe olvidar que son cultivos microbianos
    Que deben ser manejados con cuidado.

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  183. 21,22

    Las bacterias se clasifican en relación a su tolerancia al O2 en:
    Anaerobias estrictas crecen con < 0,5% de presión de O2
    Anaerobias facultativas toleran > 3% de presión de O2
    Microaerófilas crecen con 5-10% de presión de O2
    Aerobias estrictas crecen con > 10% de presión de O2
    Las bacterias anaerobias constituyen la flora normal predominante en el ser
    Humano, especialmente en la boca. El cultivo de especies anaerobias es difícil
    Por:
    1) Las dificultades técnicas para garantizar la anaerobiosis durante la
    Manipulación de la muestra y su posterior cultivo
    2) La frecuente presencia de mezclas complejas de especies anaerobias y
    Facultativas
    3) Los requerimientos nutricionales de medios enriquecidos
    Para considerar un aislado bacteriano como una especie anaerobia es necesario
    Comprobar primero que no es aerotolerante. Para ello se subcultiva en dos
    Medios, incubando uno de ellos en condiciones de anaerobiosis y el otro en
    Aerobiosis. Tras 24 horas de incubación se examinan las placas y se comparan
    Los crecimientos.

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  184. Microorganismos que se van a procesar en las prácticas:
    •Bacilo grampositivo anaerobio (Clostridium)
    •Bacilo gramnegativo anaerobio (Bacteroides)
    Medios que se van a usar en la práctica.
    COLUMBIA AGAR: Está compuesto de extracto de carne, extracto de levadura,
    Peptonas, glucosa, nacl y sangre al 5% (ésta favorece el crecimiento de
    Microorganismos patógenos para el hombre).
    BRUCELLA AGAR: contiene también sangre al 5% y está suplementado con
    Vitamina K1 y hemina. Sirve para el cultivo en condiciones de anaerobiosis.
    TIOGLICOLATO: Medio semisólido compuesto de Cistina (aminoácido azufrado
    Que actúa con función reductora) tioglicolato, agar y resazurina que se colorea de
    Rosa en presencia de oxígeno. Este medio sirve para conocer si los
    Microorganismos son aerobios estrictos, anaerobios estrictos, microaerófilos o
    Anaerobios facultativos.
    Siembra para la prueba de aerotolerancia:
    Los números pares inocularán el microorganismo par en las 2 placas (una de agar
    Columbia y otra de agar Brucella) rotuladas con número par y los impares en las
    Impares.
    Coger una colonia del microorganismo correspondiente con el asa previamente
    Esterilizada en la llama del mechero. En el borde de la placa de Columbia agar
    Sembrar con el asa, haciendo estrías muy juntas hasta cubrir aproximadamente
    Un tercio de su superficie. A partir de este punto y con el asa previamente
    Esterilizada y enfriada continuar la siembra, tocando las últimas estrías y
    Realizando estrías en otra dirección más separadas (siembra por agotamiento).
    Proceder igual con la placa de Brucella agar.
    LAS PLACAS DE AGAR COLUMBIA SERÁN INCUBADAS EN LA ESTUFA A
    35ºc DURANTE 24 HORAS.

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  185. Incubación en condiciones anaerobias:
    Las placas de agar Brucella se incuban en jarras
    Para anaerobiosis que se cierran herméticamente
    Con un sobre generador en su interior. Este sobre,
    Mediante una reacción química, genera H2 y CO2
    Que desplazan al O2 en el interior de la jarra (ver
    Imagen).
    Siembra en medio de Tioglicolato:
    Coger una colonia con el asa previamente esterilizada en la llama del mechero, e
    Introducir en el tubo hasta el fondo y sacarlo. Flamear la boca del tubo antes y
    Después de introducir el asa.}}

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  186. PRUEBA DE SNYDER (SUSCEPTIBILIDAD A LA CARIES DENTAL)
    En la aparición de la caries hay que tener en cuenta:
    •S. Mutans se une al esmalte, metaboliza disacáridos acidifica ph.
    •Conforme más se acidifica, más difícil le resulta crecer pero:
    •Lactobacillus comienza a crecer y a acidificar más el medio destrucción
    Esmalte caries.
    El medio de Snyder mide la producción de ácido a partir del metabolismo de la
    Glucosa por los microorganismos de la saliva. Está compuesto por: Glucosa,
    Incubación en condiciones anaerobias:
    Las placas de agar Brucella se incuban en jarras
    Para anaerobiosis que se cierran herméticamente
    Con un sobre generador en su interior. Este sobre,
    Mediante una reacción química, genera H2 y CO2
    Que desplazan al O2 en el interior de la jarra (ver
    Imagen).
    Púrpura de bromocresol, Triptosa, cina y Agar y su ph es de 4.8. Cuando
    Desciende a 4.4 ó menos el indicador vira a amarillo.
    Ph 7 6 5 4
    Materiales y medio que usan en la práctica:
    1. Medio de Snyder en tubo.
    2. Placa de Petri estéril.
    3. Pipeta de bulbo estéril.
    Siembra del medio de Snyder:
    1. Calentar el medio de Snyder hasta que se licue.
    2. Recoger la saliva en una placa de Petri.
    3. Con la pipeta, homogeneizar la saliva.
    4. Pipetear 0.2 ml. De saliva en el medio a 45º C aproximadamente.
    5. Mover el tubo entre las palmas de las manos para mezclar la saliva con
    El medio.
    6. Solidificar en posición vertical.
    7. Observar a las 24 y 48 horas.

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  187. Muchas especies bacterianas son tan parecidas morfológicamente que es imposible diferenciarlas sólo con el uso del microscopio. En este caso, para identificar cada tipo de bacteria, se estudian sus características bioquímicas sembrándolas en medios de cultivo especiales. Así, algunos medios contienen un producto que inhibe el crecimiento de la mayoría de las especies bacterianas, pero no la del tipo que se los paleontologos comen ciertas especias diversas, estas utilizadas en el cultivo de dicho objeto desea averiguar si está presente. Otras veces, el medio de cultivo contiene determinados azúcares especiales que sólo pueden utilizar algunas bacterias. En algunos medios se añaden indicadores de ph que cambian de color cuando uno de los nutrientes del medio es fermentado y se generan catabolismos ácidos. Si las bacterias son capaces de producir fermentación, generan gases que pueden ser detectados cuando el cultivo se realiza en un tubo cerrado.
    Con otros medios de cultivo se puede identificar si las bacterias producen determinadas enzimas que digieren los nutrientes. Así, algunas bacterias con enzimas hemolíticas (capaces de romper los glóbulos rojos) producen hidrólisis y cambios apreciables prosaicamente en las placas de agar-sangre.
    Los diferentes medios y técnicas de cultivo son esenciales en un laboratorio de microbiología de un hospital, pues sirven para identificar las bacterias causantes de las enfermedades infecciosas y los antibióticos a los que son sensibles esas bacterias. Los cultivos suelen usarse en medicina para determinar la presencia de agentes patógenos en fluidos corporales (como por ejemplo la sangre o la orina.

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  188. Hay muchos microorganismos que son muy difíciles o imposibles de cultivar, no
    Pudiendo utilizar para su identificación estas técnicas. Así por ejemplo:
    •Hay bacterias que requieren muchos factores de crecimiento; siendo muy
    Difícil su cultivo. (Treponema pallidum).
    •Los virus, que para crecer necesitan cultivos celulares, que implican mucho
    Tiempo y material caro (ej. VIH) o bien es poco eficaz (hepatitis B) o no crecen
    (Epstein Barr).
    En estos casos vamos a poner de manifiesto la posible infección por la detección
    De anticuerpos producidos frente al microorganismo causal en el suero o a veces
    Otras muestras del paciente. Estas técnicas nos permitirán hacer un “Diagnóstico
    Indirecto” de la enfermedad. Además, el estudio de los anticuerpos puede valorar
    La evolución de una enfermedad, la eficacia de un tratamiento o el estado inmune
    De la población. Todos estos procedimientos se basan en la unión específica de
    Un antígeno (proteína procedente del agente infeccioso) con su correspondiente
    Anticuerpo (producido por nuestras defensas).
    Toma de muestra:
    Estas determinaciones, salvo excepciones (LCR...) Se van a realizar en suero.

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  189. La inmunoglobulina G (igg) es una de las cinco clases de anticuerpos humorales producidos por el organismo. Se trata de la inmunoglobulinapredominante en los fluidos internos del cuerpo, como son la sangre, el líquido cefalorraquídeo y el liquido peritoneal (líquido presente en la cavidad abdominal). Esta proteína especializada es sintetizada por el organismo en respuesta a la invasión de bacterias, hongos y virus. Es la inmunoglobulina más abundante del suero, con una concentración de 600-1.800 mg por 100 ml.1 La igg constituye el 80% de las inmunoglobulinas totales.
    La igg es la única clase de inmunoglobulinas que atraviesa la placenta, transmitiendo la inmunidad de la madre al feto de manera natural y pasiva. Es la inmunoglobulina más pequeña, con un peso molecular de 150.000 Daltons,1 así puede pasar fácilmente del sistema circulatorio del cuerpo a los tejidos. La síntesis de igg se controla principalmente por el estímulo de los antígenos. En el caso de animales axénicos (sin microbios), con niveles de igg muy bajos, el nivel de igg se eleva en cuanto se les traslada a un ambiente normal.
    Hay veces que estas inmunoglobulinas no responden adecuadamente. Especialmente en casos de Anaplasmosis simple.
    Las cadenas H de la igg son del isotipo γ, contiene un 2-3% en peso de glúcidos.

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  190. Inmunoglobulina G IGG
    Es un examen para medir en forma rápida y precisa el nivel específico de ciertas proteínas, llamadas inmunoglobulinas, en la sangre. Específicamente, este examen busca las proteínas igm, igg e iga.
    Razones por las que se realiza el examen
    El examen proporciona una medición rápida y precisa de las cantidades de inmunoglobulinas M, G y A. Las inmunoglobulinas son proteínas que son en su mayoría anticuerpos.
    Valores normales
    • Igg: 560 a 1800 mg/dl
    • Igm: 45 a 250 mg/dl
    • Iga: 100 a 400 mg/dl

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  191. Screening, en medicina, también denominado cribado o tamizaje, es un anglicismo utilizado para indicar una estrategia aplicada sobre una población para detectar una enfermedad en individuos sin signos o síntomas de esa enfermedad. La intención del screening es identificar enfermedades de manera temprana dentro de una comunidad. Esto permite la rápida gestión e intervención con la esperanza de que se reduzcan los efectos (dolor, fallecimiento) provocados por la enfermedad.

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  192. Prueba de Snyder:
    Prueba la rapidez de la formación de ácido cuando una muestra de saliva estimulada se inocula en agar glucosa ajustado a un ph de 4.7 a 5 y con el uso del verde de bromocresol como colorante indicador. En forma indirecta esta prueba también es una medida de las bacterias ácido génicas y acidúricas.
    Esta Prueba Está Basada En El Tiempo E Intensidad Con Que Cambia El PH Del Medio De Cultivo Inoculado Con Una Muestra De Saliva. La Acción De Microorganismos Acidogénicos Anaerobios Sobre La Glucosa Presente Un El Medio De Cultivo Permite Que Al Acidificarse El Medio Cambie El Indicador De PH, Verde De Bromocresol, Desde El Color Azul Verdoso Característico Hasta Una Tonalidad Amarillo-Limón, La Velocidad A La Que Se Efectué Este Cambio Indicara La Actividad Cariogénica De La Muestra, A Menor Tiempo De Cambio Mayor Actividad

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